Site Loader

Содержание

Корни орхидеи вылезли из горшка и торчат снизу или сверху

Если корни орхидеи вылезли из горшка, в первую очередь, это означает, что они работают.

Зная физиологические особенности орхидных, понимая их природные свойства, цветовод достаточно быстро разберется в причинах такого явления.

Работа корней эпифитных растений сама по себе очень увлекательна, интересна и, в то же время, очень сложна.

В природе, в естественной среде они цепляются за другие растения или удобные для устойчивости выступы. В домашних условиях, произрастая в совершенно других условиях, корневая часть работает иначе.

Но слишком большое количество вылезших корней может привести к негативным последствиям для растения. Поэтому цветоводу стоит обращать на этот процесс внимание и принимать меры.

Когда горшок становится мал для растения?

При развитии корней у многочисленной группы орхидных можно наблюдать три стадии развития:

  1. Образование молодых корешков и их рост.
    В период роста они внедряются в промежутки между компонентами субстрата и «присасываются» к нему, давая тем самым растению обрести устойчивость.
  2. На второй год происходит их ветвление, увеличивающее площадь поверхности корневой части, что позволяет им увеличивать площадь всасывания питательных веществ и влаги.
  3. С годами отмирают наиболее старые корни.

Важно! Развитие корневой системы довольно тесно связано с фазами развития и роста надземной части.

Нарастание корневой части требует большую площадь поглощающей поверхности. Нехватка питательных растворов, кислорода и освещения не дают растению эффективно расти и развиваться. В следствие этого появляются воздушные корни, напоминающие фантастических монстров.

В природе они охватывают большие площади вдоль стволов деревьев, скалистых выступов и т. п., для увеличения поверхности получения питательных веществ и влаги. В домашних условиях, в тесноте горшка

они тянутся наружу для получения необходимого из воздуха.

Воздушные корни — норма или патология?

То, что они сбегают и торчат из емкости – естественный процесс, не представляющий большой угрозы. Никакой патологии в этом нет. Наличие воздушных корней у эпифитных орхидей – естественное и нормальное явление.

Они служат не только опорой для надземной части и инструментом питания, но и активно участвуют в фотосинтезе.

Основные причины «сбегания» более 3-4 корней: нарушение режима полива и размер емкости произрастания.

Корни живые или мертвые — как определить?

Так как корни являются активными участниками процесса фотосинтеза, то определить их жизнеспособность достаточно просто.

Работающие, живые корни имеют ярко-изумрудный цвет, сигнализирующий об оптимальной их работе.

Зеленый оттенок корней свидетельствует о наличие в их структуре хлорофилла или симбиотов, принимающих активное участие в фотосинтезе.

Блеклый, светлый или серый цвет, сморщивание, скукоживание сигнализирует о неполадках в работе. Причин неработающего состояния может быть несколько. Основной является ненадлежащий уход за орхой.

Если при погружении в воду корни наполняются и впитывают влагу, то жизнедеятельность не нарушена и при правильном уходе они быстро восстановят свои функции.

Мертвые корни не будут впитывать влагу, а пораженные инфекциями при надавливании будут иметь мягкую, неплотную и склизкую структуру. Здоровые корни помимо зеленого оттенка обладают хорошей плотностью.

Пример сухих корней орхидеи.

Пересадка – решение проблемы тесноты в емкости



Когда лучше всего пересадить тропическую красавицу?

Любые комнатные растения периодически нуждаются в пересадке, а экзоты, в силу своей капризности и особого ухода, тем более. И хотя они негативно относятся к такой процедуре, раз в 2-3 года пересадка все же необходима. Оптимальным периодом пересадки является весна, когда у растения активируются ростовые процессы.

Но нередко для спасения тропической красавицы приходится принимать решительные меры и в другие периоды года. Такими причинами являются гнилостные процессы внутри цветочного горшка

, увядание и опад листьев, неустойчивость растения в емкости.

Рекомендация! Если корням тесно, они портят эстетический вид, но экзот чувствует себя нормально и нет явных признаков какого – либо заболевания, то растение не стоит беспокоить до плановой пересадки.

Как не навредить растению в процессе?

Чтобы не навредить растению в процессе пересадки, следует придерживаться определенных правил, наработанных годами опытными цветоводами:

  • За пару дней до экстренной пересадки обрезать цветоносы для аккумулирования сил растением.
  • Процедура извлечения корневой части цветка должна проводиться аккуратно и последовательно, чтобы избежать повреждения корней, которые сильно переплетают фракции коры и инертных компонентов.
  • Обрезка поврежденных корешков и других частей производится только острым дезинфицированным инструментом. Причем при каждом срезе требуется его обработка.
  • Места срезов обрабатываются толченным активированным углем или другими специальными препаратами. После обработки требуется продолжительная просушка срезов.

Пересадка орхидеи.

Нужно ли удалять сухие и подгнившие корни, если они не сказываются на здоровье орхидеи?

Структура корней орхидейных очень сложная. Внешне они могут выглядеть болезненно, иметь белый или желтый цвет, скукоживаться и морщиться, но внутренняя часть оставаться живой.

Такое происходит из-за сухости воздуха, от вносимых удобрений или по другим причинам. Поэтому не стоит обрезать сухие корешки без проверки их на впитывание. Стоит опустить их в теплую воду и если они впитывают влагу, то вполне здоровы. В противном случае их стоит удалить.

Гнилые также следует проверять на распространение очага гниения. И обрезать только до живой ткани. Следует помнить, что места срезов нуждаются в антисептической обработке.

Процесс пересадки растения в большую емкость

Процедура пересадки выполняется аккуратно и последовательно:

  1. Захватив розетку, корневая часть вынимается из горшка вместе с субстратом. При затруднении извлечения, емкость следует разрезать или сломать, чтобы не повредить корни.
  2. Хорошо промыть корневой ком под струей теплой воды для удаления остатков субстрата. Аккуратно отсоединить прилипшие фракции коры от корней. Промыв корешки, провести визуальный осмотр их состояния.
  3. Острым, продезинфицированным инструментом удалить нитеподобные и поврежденные гнилью корни. При неполном повреждении срезать только гнилую часть. Оставлять только здоровые, зеленые и упругие корешки.
  4. Для профилактики можно промыть корневую часть в слабом растворе марганцовки.
  5. Места срезов обработать активированным, древесным углем или толченной корицей.
  6. Удалить засохшие листья. Для этого лист разрезается вдоль и каждая половинка отсоединяется от стебля выкручиванием.
  7. Растение подлежит обсушке в течении 8-12 часов.
  8. Новая емкость подбирается размером на 2-3 см шире объема корневой части. В ней проделывается необходимое количество дренажных отверстий. Перед высаживанием ее следует промыть в мыльном растворе для обеззараживания.
  9. Посадка обработанного и высушенного растения производится согласно рекомендованным инструкциям в новый качественный субстрат.



Можно ли обрезать корни, которые вылезли из горшка?

Воздушные корни орхидей – это видоизмененный вариант корневой системы, расположенный в надземной части растения и выполняющий разнообразные функции. В основном, это добыча питания, влаги и как опорная часть.

Частично или полностью обрезаются только больные корни. Здоровые не стоит удалять, даже если они портят внешний вид или их слишком много. Большое их количество обусловлено неправильностью ухода.

Совет! Отсутствие или долгое непоявление молодых воздушных корешков говорит об корректировке частоты поливов. Их большое количество (больше 7-8) говорит об сокращении частоты полива.

Что делать с корнями, которые вылезают:

Снизу горшка, из отверстий емкости

Иногда корни прорастают в дренажные отверстия. Опытные цветоводы не рекомендуют их обрезать и предпринимать каких-либо действий до пересадки. Если орха цветет, то дождаться окончания цветения и пересадить в большую емкость.

Оптимальный вариант – обеспечить безопасность корней и дождаться плановой или внеплановой пересадки сразу после цветения. Если не цветет, то желательно пересадить.

Из горшка сверху

Многочисленный поток корней поверх субстрата или их рост только вверх — в целом нормальное явление.

Чтобы этого не происходило, следует высаживать в качественный, с правильными компонентами субстрат и обеспечивать правильный полив качественной водой.

Обычно корни стремятся вверх за питанием, которого им не дается внутри горшка. Или произошло защелачивание, засоленность субстрата или его уплотнение.

Видео по теме:

В этом видео показано, как направить вниз в грунт молодые корни орхидеи, которые начали расти вверх:

А в данном видео рассказано, почему корни фаленопсиса нарастают вверх и что с этим делать:

А здесь смотрите видео с интересной информацией о воздушных корнях:

Минимизировать прорастания большого количества воздушных корней можно только соблюдением всех условий произрастания и тщательным уходом. Орхидейные довольно капризны и негативно относятся к отсутствию внимания к себе.

В то же время, не стоит сильно опасаться увеличение их присутствия. Это вполне естественный для эпифитов процесс. Обеспечив тропическую красавицу заботой, вниманием и уходом, она долгие годы будет радовать владельца полноценным развитием и продолжительным цветением.


Вконтакте

Facebook

Twitter

Одноклассники

Корни орхидеи вылезли из горшка и растут вверх-наружу: почему и что делать?

В естественных условиях орхидеи закрепляются на поверхности с помощью практически открытой корневой системы.

Корни широко разрастаются, поглощая атмосферную влагу и осуществляя под действием света процесс фотосинтеза.

В помещении условия произрастания орхидеи часто далеки от природных.

В этом случае внешние признаки растения подскажут, чего не хватает растению.

Что это означает?

В норме часть корней орхидеи всегда возвышается над субстратом – это и есть воздушные корни.

Внимание. Массовый рост воздушных корней в разные стороны за стенки горшка свидетельствует о недостаточности полива, рост корней вверх говорит о нехватке света и воздуха.

Количество корней не имеет определяющего значения, главное, чтобы они имели здоровый вид.

Почему происходит неправильный рост корней?

Неправильный рост корней происходит по ряду причин, каждая из которых связана с неблагоприятными условиями произрастания.

Высокая температура содержания

Культивирование орхидеи в условиях высоких температур часто приводит к пересыханию субстрата. В поисках влаги корни разрастаются в разные стороны.

Переизбыток или недостаток полива

Основной причиной массового развития воздушных корней у орхидеи является низкая влажность воздуха. Для предупреждения неблагоприятных процессов необходимо контролировать условия ее произрастания, особенно в зимний период.

Как правило, в это время проблема связана с радиаторами центрального отопления, которые при включенном состоянии сушат воздух. Особенно остро стоит проблема в зоне подоконников, где обычно располагаются вазоны с орхидеями. В этом случае:

  • орхидею убирают с солнечных лучей или подальше от батарей;
  • для поддержания естественной влажности воздушные корни прикрывают мхом;
  • поливают только мягкой водой.

Противоположностью недостаточного полива является чрезмерный полив, который приводит к нехватке кислорода и загниванию корней и также способствует росту воздушных корней, которые, таким образом, спасаются от гибели.

Излишне плотный грунт

Неправильно приготовленный субстрат часто провоцирует массовый рост воздушных корней вследствие:

  • слабой вентиляции воздуха и кислородного голодания;
  • переувлажнения и загнивания корней.

В этом случае растение стоит пересадить в новый субстрат и отрегулировать режим полива.

Недостаток освещения

Недостаточное освещение  — один из главных факторов, ведущих к снижению иммунитета растения, заболеваниям и гниению корней. Чтобы адаптироваться к этим условиям, у орхидеи растут многочисленные воздушные корни, которые растут вверх.



К чему может привести неправильный рост корней?

В неблагоприятных условиях воздушные корни подвергаются различным нарушениям и инфекциям.

Высыхание корней

Эта ситуация может быть спровоцирована:

  • неправильным поливом цветка;
  • увлажнение водой с высокой концентрацией соли;
  • слабым поливом в жаркий период;
  • чрезмерными подкормками.

Современные удобрения представляют собой концентрат минеральных элементов, неправильная дозировка которых может причинить ожог на корнях.

Появление плесени

Плесень на корнях – первый признак появления инфекционного грибка. Его развитие стимулирует рад факторов, особенно быстро при одновременном воздействии:

Если плесень поразила только грунт и не затронула корневую систему, то:

  • верхний пласт почвы взрыхляют и просушивают;
  • полив осуществляют только после окончательной просушки почвы.

Если плесень уже захватила корневую систему, орхидею необходимо пересадить:

  • извлеченные из почвы корни промывают под струей теплой воды;
  • удаляют больные и засохшие;
  • погружают корневую систему в фунгицид на 20 минут.

Растение высаживают в подготовленный новый субстрат.

Покраснение кончиков корней

Это не является каким-либо заболеванием или проблемой и происходит в результате нормального роста корней.

Одеревенение

Появление сильно загрубевших и одревесневших корней происходит в процессе их естественного старения. В таком виде они часто становятся причиной появления корневых инфекций, поэтому их нужно обрезать.

Ржавчина или почернение воздушных корней

В некоторых случаях можно наблюдать почернение или ржавый цвет на поверхности воздушных корней вследствие отложения солей. Происходит это:

  • при поливе водой с высокой минерализацией, когда корни в середине горшка не успевают напитаться влагой;
  • при неправильной дозировке удобрения, следствием которой является ожог корней или неправильно проведенной подкормке. Чтобы этого не произошло, вносят удобрение непосредственно после полива орхидеи.

Если при этом воздух в помещении сухой ситуация может резко усугубится, поэтому последующие действия осуществляют безотлагательно:

Смягчить воду в домашних условиях можно также с помощью:

  • специальных фильтров для воды;
  • добавлением в воду 3 г древесной золы или 100 г свежего торфа, которые размешивают в 10 литрах воды.

Чтобы он не образовывался, растение необходимо поливать исключительно мягкой водой (талой, дождевой или отстоянной).



Появление на корешках участков розового или красного оттенков

Появляются такие участки:

  • в жаркий период года как особый загар корней;
  • в результате фузариоза.

Фузариоз – инфекционное заболевание, которое вызывают микроскопические грибки. Проявляется заболевание в размягчении корней, пожелтении листьев и часто заканчивается гибелью растения.

Что делать, если корни орхидеи вылезли из горшка и растут вверх?

Все действия должны быть направлены на нормализацию ухода за орхидеей.

Регулировка режима полива

Чтобы не возникло проблем с корнями, в промежуток между поливами субстрат должен полностью просыхать. В летний сезон рекомендовано поливать цветок 2-3 раза в неделю, зимой – не чаще одного раза в 10 дней.

Важно. При поливе, прежде всего, ориентируются на состояние (влажность) субстрата в горшке, а не на рекомендованную частоту поливов.

Чтобы насытить орхидею влагой, не стоит поливать растение из лейки. При этом вода проходит сквозь грунт, лишь слегка смачивая корни. Правильный полив проводят методом погружения растения в емкость с водой на 10-15 мин.  или проводят обильное дождевание из душа.

Увеличить освещение

Орхидея любит большое количество рассеянного света, что позволит корням нормально расти и развиваться:

  • в осеннее и зимнее время световой день стоит удлинить до 12 часов, используя люминесцентную лампу;
  • чтобы не вызвать ожога на корнях, растение предохраняют от попадания прямых солнечных лучей, слегка затемняя южное окно пластиком, матовой пленкой или любым другим материалом.

Комфортное освещение также способствует укреплению иммунитета орхидеи.

Не делать обрезку

Удалять воздушные корни или заталкивать их в горшок, как часто делают начинающие цветоводы, нет необходимости.   Обрезку производят только при обнаружении загнивания или других заболеваний корней.                                                   

Если цветку тесно в горшке – пересадить

Учитывая негативные факторы, которые связаны с недостаточным объемом горшка или слишком плотным субстратом (кислородное голодание корней, переувлажнение), орхидею стоит пересадить.

Соблюдение требований культивирования орхидеи не нуждается в особых навыках. Даже при возникновении проблем забота о растении поможет восстановить прекрасный вид орхидеи.

Видео по теме:

Смотрите на видео, отчего корни фаленопсиса нарастают вверх и что с этим делать:

А здесь показан один из способов, как направить растущие вверх молодые корни фаленопсиса в грунт:

Полезные советы

При посадке орхидеи на дно горшка насыпают пятисантиметровый слой дренажа из керамзита, перлита или шариков пенопласта. Поверху выкладывают подготовленную почвенную смесь высотой в 5-6 см, на ней располагают орхидею.

Корни засыпают субстратом и на несколько минут опускают горшок с растением в емкость с водой. Надеемся, после прочтения нашей статьи вам стало более понятно, что делать с корнями орхидеи,  которые растут наружу. Если же остались вопросы – то пишите их в комментариях, постараемся ответить!


Вконтакте

Facebook

Twitter

Одноклассники

От орхидеи остались только корни

Это тропическое растение порой ведет себя довольно капризно и требовательно и по какой-то причине может остаться без листовой массы.

И часто цветоводы задаются вопросом, можно ли и как спасти орхидею, если у нее остались только корни.

В этом случае надо будет провести реанимацию, о которой пойдет речь в данной статье.

Разбираемся в проблеме

Если растение теряет одну листовую пластину, то для него это не проблема. Но если куст сбрасывает все листья, то тут явная ошибка в уходе и надо разобраться, чтобы это не повторялось. Причины, по которым растение может лишиться листовой массы:

  • Окончание периода цветения;
  • Болезнь корневой системы.

ВАЖНО! Какая бы ни была причина, ее надо устранить и реанимировать растение.

От орхидеи остались одни корни.

Больные корни растения – причина для принятия экстренных мер

Если корневая система погибла, то листьям не будет хватать питания и куст их сбросит. Поэтому надо организовать полив таким образом, чтобы корни растения не начали гнить.

Возможные причины

Рассмотрим основные причины, по которым орхидея может потерять свою листовую массу:

  • Плохое освещение – орхидея может мириться с нехваткой рассеянного солнечного освещения небольшой период. Но если он затягивается, растение ослабевает, листья вытягиваются и истончаются. Вследствие чего они опадают;
  • Потеря корней – корни чаще всего гибнут от гниения, так как неопытные цветоводы часто поливают свою орхидею, не давая просыхать субстрату;
  • Перегрев растения – под воздействием повышенной температуры листовая масса испаряет слишком много влаги и теряется тургор листовой массы, и, как следствие, куст орхидеи теряет свою листву;
  • Фузариоз – это грибковое заболевание, приводящее к потере листвы. Если вовремя приступить к лечению растения, то оно все же потеряет часть листвы, но у цветовода останется шанс спасти весь оставшийся куст.

ВАЖНО! Если за кустом орхидеи правильно организовать уход, то он не будет сбрасывать свою листовую массу, а будет ее только наращивать.

Здоровый корень.

Как отличить больной и гнилой корень от здорового?

Отличить здоровый корень от больного может даже новичок в выращивании орхидей.

Здоровый корень имеет:

  • Окрас корня светло-зеленый с серебристым отливом веламена;
  • Упругий;
  • При нажатии не деформируется;
  • Корни, растущие в толщине субстрата, приобретают светло-коричневый оттенок из-за отсутствия солнечного освещения.

Поврежденные и проблемные корни:

  • Имеют гнилостный запах;
  • Темный цвет;
  • Мягкие на ощупь;
  • При нажатии выделяют жидкость с гнилостным запахом.

Больные и гнилые корни орхидеи.



Что делать с больными корнями растения?

При обнаружении поврежденных корней их надо обрезать секатором до здорового места, имеющего светлый срез.

Секатор обрабатывают спиртом после каждого растения, которого реанимируют, чтобы если один из них поражен инфекцией, то не заразить все цветы, находящиеся в этот момент на реанимации.

После того, как будут вырезаны все места, пораженные гнилью, срезы обрабатывают одним из антисептиков:

  • Активированным углем;
  • Древесной золой;
  • Корицей.

После обрезания и обработки антисептиком требуется просушка оставшейся корневой массы в течение не менее 8 часов, после цветок высаживают в соответствующий субстрат.

ВАЖНО! Первый полив осуществляют на 5 сутки после высадки. Это время необходимо для заживления все ранок, нанесенных корням во время реанимации.

Что делать, если у орхидеи остались только корни?

Если на орхидеи остался один корень и часть ствола, то у цветовода и его подопечной есть шанс выжить и продолжить свое великолепное цветение.

Обрезка всех пораженных участков

Обрезка пораженных участков — это первый шаг в реанимации растения. Вырезается все, что имеет темный цвет, высохло, сгнило или при нажатии превращается в жидкую субстанцию.

Вырезать лучше всего секатором, так как он специально устроен так, чтобы его срезы на растении быстро затягивались.

Вырезается все до здоровой светлой ткани без темных вкраплений. Если секатора нет, то можно использовать ножницы или хирургический скальпель.

ВАЖНО! После каждого растения режущий прибор надо дезинфицировать в спирте.

Тщательная дезинфекция срезов

Все срезы хорошо обрабатываются фунгицидом и любым антисептиком, чтобы гниение прекратилось и не возникало больше на растении.

Если растение не обработать и высадить в субстрат, то через некоторое время обнаружится полная потеря корневой массы из-за гниения. Поэтому этот пункт в реанимации очень ответственный и обрабатывать надо внимательно каждый срез.



Лечение фунгицидом для предотвращения развития грибковых заболеваний

Причина развития грибковых болезней на орхидных растениях — это неправильно организованный уход. И чаще всего это чрезмерный обильный полив, который влияет на повышенную влажность внутри субстрата.

Это приводит к образованию патогенных грибков, которые могут погубить орхидею. Чтобы этого не случилось, ее надо обработать соответствующим фунгицидом. Среди эффективных препаратов сейчас опытные цветоводы выделяют:

  • Алипирин;
  • Квадрис;
  • Микосан;
  • Триходермин;
  • Фитоспорин;
  • Чистоцвет.

Фунгицид фитоспорин.

ВАЖНО! Применять фунгициды надо строго по инструкции, и если сомневаетесь, то стоит посоветоваться с опытным цветоводом, которого можно найти на общеизвестных форумах.

Пересадка в новый субстрат

После обрезки и обработки корневой массы орхидею надо пересадить в новый субстрат, чтобы избежать повторного заражения. Перед пересадкой подбираем новый горшок по размеру корневой системы.

Если ей по-прежнему подходит старая емкость, то ее следует хорошо обдать кипятком, чтобы уничтожить патогенные грибки.

Далее насыпается слой крупной коры, который будет служить дренажом. Затем мелкая кора, в которую и высаживают растение таким образом, чтобы шейка находилась на поверхности субстрата.

ВАЖНО! Первый полив осуществляют на 5 сутки.

Пересадка растения.

Температурный режим и освещение после реанимации

Температура в помещении, где проходит реанимация растения, должна находиться в пределах 21-25 градусов тепла. Потому что колебания в меньшую или большую сторону в температурном режиме может привести к гибели ослабленного растения.

Освещение должно быть в достаточной мере, и если реанимация проходит в осеннее или зимнее время, необходимо организовать дополнительную подсветку для хорошего развития растущих корней и листьев на орхидее.

Применение стимуляторов роста корней

Циркон применяют при реанимации растения, так как он помогает лучшему наращиванию корневой массы, растение хорошо проходит адаптацию и получает повышенную стрессоустойчивость.

Эпин помогает быстрому наращиванию корней, помогает нарастить цветочную стрелку, повышает иммунитет орхидеи.

ВАЖНО! Применение этих препаратов к орхидее поможет ей хорошо продержаться в послереанимационный период.

Период восстановления цветка после реанимации

Период восстановления орхидеи напрямую зависит от ее состояния перед реанимацией, от того, насколько грамотно была проведена сама реанимация и какие условия предоставлены цветку в послереанимационный период.

В среднем, при хорошей адаптации первые корешки показываются спустя месяц, а листья могут задержаться и появиться спустя пару месяцев.

Полезные видео

Смотрите на видео реанимацию орхидеи без листьев и точки роста:

На этом видео показан похожий случай реанимации орхидеи без листьев со сгнившей точкой роста:

Если ваша орхидея скинула листья, то ей необходима помощь цветовода, чтобы нарастить себе новые. Не стоит отчаиваться, надо только применить определенные действия и цветок еще не раз порадует вас своим цветением.


Вконтакте

Facebook

Twitter

Одноклассники

У орхидеи вылезли корни из горшка: причины, что делать

Орхидея – капризное растение, нуждающееся в создании для полноценного роста нормальных условий и требующее соответствующего ухода.  При нарушении этих условий из горшка вырастают воздушные корни. Они становятся как нормальным признаком или сигнализируют о нарушении правил выращивания.

Особенности строения корней

Корни орхидеи выполняют две основные функции:

  • обеспечивают фиксацию растения на субстрате;
  • оснащают его необходимыми питательными веществами, необходимыми для полноценного роста.

У растений, растущих на деревьях, образуются воздушные корешки. Они представляют собой плотные отростки либо плоской, либо цилиндрической формы. Верхняя их поверхность покрыта защитной оболочкой, которой по структуре похоже на мягкую губку. К тому же, на ней скапливается влага, поступающая из воздуха, и обеспечивает растению необходимое питание и насыщение кислородом.

У орхидей, растущих в горшках или в саду подземные корни. Они располагаются в грунте и для хорошего роста им необходимо много пространства. Верхняя часть корневой системы находится над уровнем почвы, они поглощают воду и кислород из воздуха. Также как и воздушные корешки, они представляют собой прочную и твердую структуру.

 

Особенности подрезания

Если у орхидеи корни растут вверх, то садовода это может насторожить. Появление их над уровнем земли может показаться признаком серьезного заболевания или дефицитом места в горшке. Это делать не нужно, если корневая система здорова, имеет серый оттенок, который после полива изменяется до зеленого цвета. Прежде чем обрезать корни у орхидеи, следует определить какие они – живые или мертвые.

Живые

Живой корешок, который выступил наружу, обрезать ни в коем случае нельзя. Такая процедура вызовет у растения боль, что станет причиной увядания или развития серьезного заболевания. Отличить его от омертвевшего можно, сделав несложный тест – поместив орхидею в емкость с водой. Живой корень сразу же приобретет зеленый оттенок, а его структура станет твердой и гладкой.

Мертвые

Мертвые воздушные корни орхидеи обрезать нужно обязательно. Из-за них растению будет недостаточно питание, и оно начнет увядать. Кроме того, они мешают формированию новой корневой системы, за счет которой появилась бы надежная фиксация растение и растение хорошо росло. Отличить их от живых можно, сделав такой же тест. Мертвые корешки не изменят цвета и структуры после взаимодействия с водой, обрезать фаленопсис нужно незамедлительно.

Если они вылезли из горшка

Если корни орхидеи вылезли из горшка, то это не должно насторожить, так как такой эффект служит нормальным явлением для этого типа растения. Природой создана такая корневая система для лучшего насыщения влагой и воздухом. Обрезать требуется только мертвые корешки. Живые удалять нельзя, вне зависимости от того, сколько места они занимают в горшке.

Внимание!

Категорически запрещено обрезать воздушные корни у орхидеи, если она цветет. Такое действие станет причиной сильного стресса для цветка, из-за которого оно может заболеть или погибнуть.

Причина появления воздушных корней

Корни растут вверх далеко не у всех орхидей. Это неизбежно происходит только у некоторых видов сортов. Причинами может стать и то, если растение пребывало в неблагоприятных условиях, которые привели к высыханию, заплесневению, одервенению или изменению цвета.

Высыхание

Распространенная причина, почему корни вылезли из горшка – их пересыхание. Цветоводы считают, что это естественный процесс для самосохранения. Орхидеи проще получить питательные вещества, если корешки находятся над уровнем земли. Предотвратить это явление просто – необходимо регулярно поливать цветок.

Появление воздушного корня не единственное последствия пересыхания. Из-за этого станет легче травмировать растение при перевозке, существует большая вероятность, что у него возникнет ожог из-за передозировки удобрением или разовьется грибок. Если вовремя не обеспечить растению полив или опрыскивание, то оно быстро погибнет.

 

Заплесневение

Орхидея – очень капризное растение. Воздушные корни также могут появиться и от переизбытка влаги. При этом на них могут появиться признаки плесени и грибка. Они начинают выпирать из почвы при недостатке света или низкой температуре воздуха. Чтобы этого не допустить, необходимо поливать цветок только после того, как начала подсыхать земля. Оптимальная температура для содержания орхидей составляет 20-25 градусов тепла.

Одеревенение

Если у орхидеи много воздушных корней и при этом они имеют плотную одеревеневшую структуру – это признак старения растения. Его можно отнести к естественному возрастному неизбежному процессу. Чтобы это предотвратить, необходимо аккуратно обрезать мертвые корешки, оставив только живые.

Изменение цвета

Вместе с выступанием корней у орхидеи, они также могут изменить цветовой оттенок. Резкое покраснение свидетельствуют о том, что корешки находятся в состоянии роста, в таком случае с ними делать ничего не нужно, вскоре они вновь приобретут нормальный окрас.

Если торчат большие корни черного ржавого оттенка, это говорит о повышенном скоплении солей. Они вылазят из почвы, так как внутри нее не получают достаточного питания. При низкой температуре и сухом воздухе ситуация может усугубиться. Поэтому ради спасения растения требуется обеспечить в помещение обильное проветривание и поставить горшок вдали от отопительных приборов.

Внимание!

Летом корешки могут изменить окрас до бледно или ярко-розового. Цветоводы уверяют, что это образуется своеобразный загар или появляются последствия фузариоза. Розовые участки не являются заболеванием, растение не нуждается в лечении.

Что же делать

Первое, что нужно делать с воздушными корнями орхидеи – следить за дальнейшим поведением растения. В этот период необходимо отрегулировать полив, обеспечить цветку оптимальный уровень света и увлажнение в помещении. Если воздушное корни стали заполонять много места, то следует выполнить их пересадку в новый горшок, для этого необходимо:

  1. Дождаться окончания цветения.
  2. Достать все растение из горшка и окунуть в воду для того, чтобы субстрат и почва размякли.
  3. Аккуратно достать орхидею из грунта, слегка отряхнув корень.
  4. Удалить мертвые и засохшие корни.
  5. Посадить растение в новый горшок так, чтобы вся корневая система находилась в почве.

После осуществления пересадки рекомендуется поставить растение в тень, чтобы на него не поступали прямые лучи солнца. Рекомендуется после этого полить почву, но предварительно в новом горшке требуется создать дырки в горшке, чтобы обеспечить полноценный отход лишней жидкости.

Обрезка корней

Если корни орхидеи вылезли из горшка, то их можно аккуратно удалить. Отрезать их рекомендуется с целью оздоровления и улучшения роста

что делать, если корни растут вверх и вылезают наружу и по каким причинам это происходит

Вылезшие из горшка корни орхидеи – зрелище мало эстетичное, отражающее физиологические особенности растения. В природных условиях они служат для эпифитов опорой и источником поступления питательных веществ. У произрастающих в комнате тропических экзотов разрастающиеся корни красноречиво свидетельствуют о проблемах ухода.

Особенности корневой системы орхидеи

Корневая система орхидных в своём развитии последовательно проходит три стадии:

  • период роста – молодые корешки внедряются между компонентами субстрата, обеспечивая устойчивость растения;
  • период ветвления – деление увеличивает площадь всасывания питательных веществ и воды, обеспечивая питание орхидеи;
  • период отмирания – отслужившие своё элементы корневой системы погибают, их место занимают молодые корешки, активно внедряющиеся в субстрат.

Важно! Развитие корневой системы тесно связано с условиями роста и развития надземной части растения.

Что такое воздушные корни?

Появление воздушных корней, напоминающих щупальца фантастического монстра, обусловлено нехваткой в процессе развития орхидеи одного из трёх компонентов:

  • питательных веществ;
  • кислорода;
  • освещения.

В естественных условиях они опутывают стволы деревьев, скалистые выступы и другие свободные площади с одной целью – увеличить поверхность поступления питания и воды. Появление воздушных отростков у комнатных экземпляров – верный признак нарушения режима аэрации. Это следствие нерегулярного или чрезмерного полива, либо тесного горшка.

Почему корни вылезают из горшка?

Вылезающие из вазона корни – следствие неправильного ухода за растением. Причинами могут стать:

  • редкий полив;
  • частый полив;
  • недостаток света;
  • низкая температура;
  • изменение кислотно-щелочной среды субстрата.

Важно! Одревесневшие воздушные отростки – признак естественного старения растительного организма.

Высыхание

Естественный процесс самосохранения – получение питательных веществ из воздуха, если земляной ком стал слишком твёрдым и сухим. Пересыхание субстрата – одна из частых причин многочисленности воздушных корней. Чтобы растение пришло в норму, достаточно пересмотреть режим увлажнения, кратность полива и объём выливаемой воды.

Высыхание может привести и к другим проблемам:

  • травмированию при перевозке;
  • химическому ожогу при внесении удобрений;
  • как следствие – к созданию благоприятных условий для развития в ране болезнетворных бактерий и плесневых грибков.

Заплесневение

Переизбыток влаги в субстрате нарушает режим аэрации. Для обеспечения себя кислородом растение запускает процесс образования воздушных корней. Их достаточно просто отличить от тех, что ищут влагу: переувлажнённая почва – благоприятная среда для развития плесневых грибков. Корневая система таких растений будет иметь признаки инфицирования и гниения.

Выпирающие из земли заплесневевшие отростки – признак таких проблем:

  • избытка влаги;
  • недостатка света;
  • низкой температуры окружающего воздуха.

Одеревенение

Плотные одеревеневшие воздушные корни указывают на старение комнатного растения. Во время ближайшей пересадки следует проделать следующее:

  • тщательно осмотреть корневища;
  • проверить на наличие живых тканей, погружая в ёмкость с водой;
  • обрезать омертвевшие части.

Изменение цвета

Корни орхидеи принимают активное участие в процессе фотосинтеза. Их цвет – важный маркер нормального функционирования:

  • ярко-изумрудный колер – оптимально работающие живые элементы;
  • серый, блёклый или светлый оттенок – функционирование нарушено, но может быть восстановлено при правильном уходе;
  • мягкие, склизкие, не впитывающие воду при погружении – эти отростки стали бесполезны, их можно только удалить. Это нужно сделать, чтобы стимулировать рост новых жизнеспособных элементов. Субстрат и само растение необходимо пролечить от инфекции.

Что делать, если это происходит?

Вернуть растению привлекательный внешний вид можно несколькими способами:

  • обрезать нежизнеспособные элементы;
  • заменить субстрат;
  • пролечить растение;
  • пересадить в ёмкость большего объёма.

Внимание! Выбор способа и их комбинация напрямую зависят от причины, стимулирующей рост и развитие дополнительных элементов корневой системы. Так, бесполезно обрезать отмирающие корни, если орхидея растёт в неподходящем ей субстрате.

Обрезка

Заплесневевшие, одревесневшие или поменявшие свой цвет корни можно и нужно удалить. Процедура обрезки состоит из нескольких этапов:

  1. Подготовка инструментов. Секатор или острый нож обрабатывают раствором спирта, чтобы не занести в рану инфекцию. Маленькие или маникюрные ножницы для обрезки не используют, так как они увеличивают риск нанесения растению лишних травм.
  2. Поиск объектов для удаления. Корневой ком освобождают от остатков субстрата и увлажняют, отмечая для обрезки элементы:
    • прекратившие рост;
    • сохранившие серый цвет после контакта с водой;
    • с признаками гниения и заплесневения.
  3. Обрезка проблемных участков.
  4. Обработка места среза одним из антисептиков:
    • зелёнкой;
    • активированным углем;
    • порошком корицы;
    • раствором марганцовки или фунгицида.
  5. Посадка в горшок по традиционной схеме.

Выбор правильного субстрата

При любых пересадках орхидею следует помещать только в специальную почвенную смесь. Это залог нормального развития растения без повышенного образования воздушных корней.

Смесь из следующих компонентов максимально имитирует природные условия произрастания эпифитов:

  • древесный уголь – 1 часть;
  • торфяной мох – 2 части;
  • кора хвойных деревьев – 5 частей.

Лечение

Если отросшие грунтовые и воздушные корни гниют или плесневеют, то с ними необходимо провести следующие манипуляции:

  1. Вынуть растение из субстрата.
  2. Обрезать больные части корневой системы.
  3. Обработать оставшиеся корни фунгицидом.
  4. Пересадить после полной просушки в новый обеззараженный субстрат.

Особенность! Если пришлось удалить больше половины корневой системы, то растение отправляют «в реанимацию». Раз в два дня нижнюю часть цветка погружают в таз с раствором. Для его приготовления в 1 литре воды разводят 4 таблетки янтарной кислоты или по 1 ампуле витаминов В1, В6 и В12. Как только новые отросшие корни достигнут длины 50 мм (в среднем, через 10 недель погружения), реанимированное растение высаживают в субстрат.

Пересадка в новый горшок

Если причина «побега» корней из горшка заключается в тесноте ёмкости, то принимают решение о пересадке. Порядок действий при этом следующий:

  1. Захватывают розетку и аккуратно извлекают корневой ком из горшка вместе с остатками субстрата.
  2. Тщательно промывают под струёй тёплой воды, удаляя остатки старой коры.
  3. Проводят визуальный осмотр корневой системы. При необходимости острым продезинфицированным ножом отсекают мёртвые и гнилые участки (до живой ткани). Места среза обрабатывают порошком активированного угля или корицы.
  4. Организуют профилактическое погружение в раствор марганцовки или другого антисептика широкого действия.
  5. Оставляют растение на 8-12 часов для просушки.
  6. Подготавливают новую ёмкость:
    • ее диаметр должен быть шире корневого объёма на 2-3 см;
    • с необходимым количеством дренажных отверстий;
    • обработанную мыльным раствором (для профилактики).
  7. Посадка экзота в новый субстрат по традиционной схеме.

Внимание! В случае экстренной пересадки, за 2-3 дня до процедуры необходимо обрезать цветоносы. Это поможет растению аккумулировать силы для последующей адаптации к новым условиям.

Что делать, если корни растут вверх и вылезают наружу?

Корни поверх субстрата, растущие вертикально поверхности, – нормальное явление для представителей семейства орхидных. Однако если это портит эстетичный вид экземпляра, то не хватаются за нож, а пересматривают условия агротехники.

Усиленный рост воздушных отростков – свидетельство:

  • неправильно подобранных компонентов субстрата;
  • защелачивания почвы;
  • засоления содержимого горшка;
  • уплотнения отдельных компонентов.

Интересно! Корни, вылезающие из дренажных отверстий, говорят о тесноте вазона и красноречиво требуют пересадки.

Нужно ли обрезать, если их много?

Воздушные корни – непременный атрибут любой орхидеи. Они выполняют опорную функцию, обеспечивают растение питательными веществами и водой. Поэтому удалять следует только отслужившие или явно больные элементы. Здоровые не обрезают, а корректируют частоту поливов:

  • мало или отсутствуют воздушные корни – частоту поливов увеличивают;
  • 4-5 воздушных отростков – полив оставляют на прежнем уровне;
  • много (больше 7-8 в одном горшке) – сокращают частоту поливов.

При появлении слишком большого количества воздушных корней следует немедленно принять правильные меры, чтобы обеспечить растению должный уход.

Что делать, если у орхидеи вылезли корни из горшка. Почему это происходит

Начинающие любители орхидей часто паникуют, когда корни растения выбиваются из горшка. Не стоит беспокоиться. Для начала нужно проанализировать ситуацию, затем, приступать к действию.

Возможные причины, по которым корни не помещаются в субстрате

Воздушное питание эпифитов

Самый распространенный ботанический род орхидей, выращиваемый в домашних условиях, орхидея. Именно это растение склонно распространять корни в воздухе, поскольку относится к эпифитам. Эта категория флоры поглощает питательные вещества из воздуха. Поэтому расположение некоторых корней за пределами горшка – нормальное явление. Такие корни состоят из особенных клеток, которые впитывают полезные вещества в газообразном состоянии.

Эпифиты покрыты веламеном – специфической тканью, которая принимает питание из воздуха и продвигает ее внутрь корней.

Т. Г. Чередниченко – д-р б. н. – автор статьи «Загадочный фаленопсис».

Журнал «Нескучный сад» № 2, 2007 год

Воздушные корни фаленопсиса поглощают питание из воздуха

Нарушение режима орошения. Как исправить ошибки

Для полноценной жизни эпифитам не нужна почва. В природе они обитают на деревьях, прикрепляясь корнями к коре. В домашних условиях кору насыпают в горшок, не только для питания растений, но и в качестве опоры. Поэтому, корни, которым тесно в контейнере выбираются наружу. Это абсолютно нормально, если они имеют нормальный вид и состояние.

Здоровые корни фаленопсиса имеют правильную цилиндрическую форму, они плотные и гибкие. Их называют индикаторами полива. Если окраска ярко-зеленая, влаги достаточно. Когда на корнях появляется белесый налет, значит, пришло время орошения.

Здоровые корни, которые нуждаются в поливе

Если за пределами горшка корней немного, и они выглядят нормально, тогда все в порядке. В случае если они стали усыхать, это сигнал к тому, что орхидеям не хватает воды. Усохшие отростки нужно обрезать до живой ткани, а полив участить.

Другой вариант – воздушные корни выглядят хорошо, но их намного больше, чем в горшке. Так происходит, если орхидею поливают слишком часто. Если она не находится в стадии цветения, ее лучше пересадить в новый субстрат, а в дальнейшем увеличить интервалы между поливами.

Чрезмерная масса корней появляется из-за переувлажнения.

Важно! Не стоит забывать, что у орхидеи корни живут определенное время, после чего отмирают. Поэтому, время от времени делают тщательные осмотр растения и срезает старые, сухие и надломленные корни. Открытые ранки промокают стерильной салфеткой и присыпают толченым углем, золой или молотой корицей. Эти вещества обладают антисептическим свойством и предотвращают заражение растений болезнями и вредителями.

Другие причины повреждения корней, устранение последствий

Корни могут усыхать или гнить не только от недостатка влаги. Неблагоприятное самочувствие часто причиняют болезни и вредители. В этом случае простая обрезка не поможет. Реанимацию нужно начинать с замены субстрата, поскольку возбудители чаще всего обитают в коре.

Больным корням нужно серьезное лечение и пересадка в новый субстрат

Обратите внимание! Вновь приобретенную орхидею нужно выдержать в карантине на протяжении двух недель отдельно от других домашних растений. Это связано с тем, что при покупке грунтосмесь в горшке может быть зараженной. Тогда инфекция распространится не только на «свое» растение, но и на те, что рядом.

Если заболела орхидея, которая у вас живет несколько лет, первое, что нужно сделать заменить субстрат. Перед посадкой кору нужно подвергнуть термообработке. Можно залить кипятком и оставить до полного остывания. Затем повторить процедуру дважды.

Это уничтожит патогенные микроорганизмы и вредных насекомых, если они есть в субстрате. Перед посадкой все сухие и поврежденные корни нужно удалить и обработать лекарственными препаратами.

Воздушных корней на орхидеях — Моя первая орхидея

Приколи это

Почему у моей орхидеи растут корни? И почему они выглядят мертвыми?

Корни, которые растут над поверхностью орхидеи, называются воздушными корнями и не очень привлекательны (на мой взгляд). Они могут выглядеть беловато-серыми и никогда не казаться супер-зелеными, как закопанные корни.

Легко подумать, что они мертвы или что-то не так с вашей орхидеей, но они так выглядят.Они нормальные и здоровые. В природе орхидея пытается цепляться за деревья и кустарники вокруг нее — поэтому они так и растут. Воздушные корни также помогают в фотосинтезе и поглощают влагу из воздуха. Это помогает орхидее производить здоровые листья, корни и цветы. По этой причине их НЕ следует отрезать.

Примечание: воздушный корень легко спутать с колосом. Пожалуйста, нажмите на мой пост под названием «Разница в корне и шипах».

Захоронение надземных корней:

Тонна воздушных корней — один из признаков того, что ваши орхидеи нужно пересаживать.Особенно когда они сильно разрослись, как показано на картинках выше. Когда орхидеи так разрастутся, вы сможете закопать некоторые из них при пересадке орхидеи.

ПРИМЕЧАНИЕ: Возможно, вам не удастся закопать их все, некоторые из моих растут между листьями, а те, которые я оставляю в покое. Ниже показано…

Вернемся к закапыванию других: когда вы это делаете, вы должны быть особенно осторожны, чтобы не сломать их, потому что они могут быть довольно хрупкими.

Когда я пересаживаюсь и мне нужно закопать воздушные корни, я немного замачиваю всю орхидею в ведре с водой комнатной температуры, и корни становятся более податливыми, чтобы их можно было закопать. Если вы просто заставите их заставить их сломаться. И хотя воздушные корни могут быть уродливыми, они по-прежнему обеспечивают орхидею энергией и питанием, поэтому мне нравится их хранить. Когда корни станут немного более податливыми, вы можете осторожно направить их в горшок и покрыть корой или мхом. Если один или два сломаются, это еще не конец света.

Связанные

выращивающих орхидей | HowStuffWorks

Просмотрите следующие краткие описания всех видов орхидей и посмотрите, что вам нравится.Для получения дополнительной информации и подборки фотографий орхидей обязательно переходите по ссылкам на отдельные цветы. Вы будете готовы начать сбор орхидей в кратчайшие сроки.

Эта орхидея Chysis — всего лишь один из многих видов орхидей
, которые вы можете включить в свою домашнюю коллекцию.

Орхидея Anota violacea или Rhynchostylis violacea: у этой орхидеи как зимой, так и весной образуются лавандово-белые цветки.

Орхидея Anguloa uniflora: это растение, также известное как лодочная орхидея или тюльпановая орхидея, имеет большой ароматный кремово-белый цветок.

Орхидея Ascocentrum curvifolium: эта орхидея меньшего размера родом из Таиланда и цветет ярким оранжево-красным цветом.

Орхидея Брассавола: названный в честь венецианского ботаника, этот род орхидей включает выносливые растения, которые легко выращивать в помещении.

Орхидея Bulbophyllum lobbii: эта орхидея имеет псевдобульбы и названа в честь ее толстых листьев.Его цветок бежевый с желтой губой.

Орхидея Каттлея: это обычное семейство орхидей с цветами традиционной формы орхидеи, и гибридизаторы дали бесчисленное количество разновидностей.

Орхидея Chysis laevis: Немного темпераментная, эта орхидея не любит пересаживать и цветет желтым и фиолетовым.

Орхидея Cycnoches loddigesii: также известное как орхидея-лебедь, это растение может цвести как мужскими, так и женскими цветками или обоими. Оба пола зеленовато-коричневые, но имеют разную форму.

Орхидея Цимбидиум: Эти орхидеи очень любят и часто используют, и они могут быть довольно крупными, хотя были выведены более мелкие разновидности.

Орхидея дендробиум: В этом семействе орхидей 1600 видов, с цветами всех цветов. Они названы в честь их естественной склонности жить на деревьях.

Орхидея Доритис: Эта орхидея предлагает кожистые листья и долговечные цветы, распускающиеся на высоком шипе.

Орхидея Epidendrum: Это семейство орхидей насчитывает более 1000 видов, многие из которых имеют ароматные цветы.

Орхидея Laelia: Относящиеся к каттлее, это семейство орхидей варьируется от растений с 8–10-футовыми цветочными кустами до более мелких коктейльных разновидностей, часто используемых в корсаже.

Орхидея Lockhartia oerstedii: Орхидея, также известная как плетеная орхидея из-за конфигурации листьев, почти постоянно цветет цветами, которые свисают на тонких стеблях, как серьги.

Орхидея Lycaste: это семейство орхидей цветет разными цветами, а растения с белыми цветками являются национальным цветком Гватемалы.

Орхидея Maxillaria houtteana: легко выращивать в помещении, эта орхидея цветет кожистым корично-коричневым цветом.

Орхидея Милтония: также известная как орхидея анютиных глазок, эти растения имеют плоский открытый цветок, и на них приятно смотреть, даже когда они не цветут.

Орхидея Odontoglossum: Кажется, что у цветов этой орхидеи есть зубы и язык, отсюда и название.

Орхидея онцидиум: большие брызги желто-коричневых цветов на этих орхидеях сравнивают с танцующими куклами и золотыми дождями.

Орхидея Paphiopedilum: также известная как орхидея женских тапочек, эти растения относятся к легко выращиваемым североамериканским тапочкам.

Орхидея фаленопсис: Названная «орхидеей-моль» из-за трепещущих цветов, эти растения идеально подходят для выращивания в помещении.

Орхидея Pleurothallis: Этот род американских орхидей включает в себя множество мелких и миниатюрных видов, отдельные цветы которых трудно увидеть без увеличительного стекла.

Орхидея Renanthera Brookie Chandler: Эта орхидея любит расти при домашних температурах и получила свое название от рогов, которые у нее есть.

Орхидея Rhynchostylis coelestis: Вертикальные брызги белых и бледно-голубых цветов являются отличительной чертой этой орхидеи.

Орхидея Rodriguezia secunda: Названная в честь испанского ботаника, эта орхидея цветет розовым оттенком и прекрасно растет при искусственном освещении.

Орхидея Sophronitella violacea: Эта крошечная бразильская орхидея обычно меньше трех дюймов в высоту, но имеет цветки лавандово-розового цвета толщиной в один дюйм.

Орхидея Stanhopea: Эти орхидеи следует выращивать в корзинах из проволочной сетки, чтобы их большие восковые цветы могли свисать для создания драматического эффекта.

Орхидея Ванда: эти орхидеи произрастают в Индии и на Дальнем Востоке, и они могут вырасти довольно высокими, поэтому им требуется поддержка.

Благодаря обилию орхидей на выбор и информации, необходимой для их выращивания прямо здесь, вам теперь ничто не мешает добавить красоту и элегантность этих цветов в свой дом.

Ознакомьтесь с этими ресурсами, чтобы найти больше идей и информации о размещении растений вокруг вашего дома:

  • Садоводство: рассматриваете ли вы овощи, цветы или листву, факты, которые вам понадобятся, находятся здесь. Изучите все основы успешного садоводства.
  • Комнатные растения: Хотите знать, что может красиво смотреться в окне вашей кухни? Узнайте, какие растения самые счастливые в доме.

Реклама

Пересадка орхидей — основы сада

Пересаживание орхидей имеет решающее значение для их ухода и цветения, но это необходимо делать иначе, чем для других комнатных растений.Как только вы примете тот факт, что орхидеи разные, уход за орхидеями станет простым. Регулярная пересадка орхидей обеспечит хорошую корневую систему и много цветов.

Пересадка орхидей — шелуха кокоса, Роберт Павлис

Пересадка орхидей — когда?

Когда нужно пересаживать орхидею? Золотое правило — каждые два года — некоторые исключения см. В следующем разделе. Если это делать каждые два года и не поливать, ваша орхидея всегда будет иметь хорошую корневую систему.Важно делать это регулярно, потому что среда для орхидей — материал в горшке — разрушается и становится слишком мелким. Затем в нем содержится слишком много воды и недостаточно воздуха. В среде также начинают накапливаться соли, которые смертельно опасны для орхидей. Пересмотр каждые два года решает обе проблемы.

Как насчет пересадки только что купленной орхидеи? Вы не знаете, сколько времени он находится в горшке. Если вы купили его у производителя орхидей, дата пересадки будет указана на этикетке растения. Если нет, спросите их, когда он в последний раз пересаживался.Если они не знают, вы можете дважды отказаться от покупки у них орхидей.

Следует ли пересаживать, когда он цветет? Лучше всего дождаться окончания цветения, даже если вам придется продлить правило двух лет на несколько месяцев. Пересаживать орхидеи в 2,5 года можно. Но если вам понадобится пересадка по какой-то экстренной причине, это не убьет растение и не сократит период цветения. Просто обращайтесь с растением осторожно, чтобы не сорвать цветы или бутоны.

Видео о пересадке орхидей

Если вы предпочитаете просматривать видео по этой теме, взгляните на это:

Если вышеуказанное видео не работает, попробуйте: https: // youtu.be / JX4-GFdaEWM

Пересадка орхидей раньше

Бывают случаи, когда вы не должны следовать приведенному выше правилу двух лет.

Орхидеи, продаваемые в продуктовых магазинах и крупных коробочных сетях, обычно импортируются в страну без корней и пересаживаются непосредственно перед продажей. Так что теоретически у вас есть 2 года с момента покупки до того, как его нужно будет пересадить. Проблема в том, что многие такие растения выращиваются в горшках во мхе сфагнум, а этот материал очень трудно правильно поливать, и он быстро разрушается. Если это сфагнум, сообщите об этом, как только орхидея перестанет цвести.

Недавно я купил орхидею и, вернув ее домой, понял, что в горшке нет дренажного отверстия! Эта орхидея обречена на смерть, если я не буду поливать ее очень тщательно. Я сразу же пересадил его в горшок с дырками, хотя он уже полностью зацвел.

Другое исключение из правила двух лет — это когда ваши корни выглядят как на картинке ниже. Если у вас много гниющих корней в горшке, это явный признак того, что вы перебрали с поливом или что почвенная среда не высыхает достаточно быстро.В любом случае я предлагаю немедленно пересадить растение, чтобы попытаться спасти растение.

Выбор правильной заливочной среды

Заливочная среда — это материал в горшке. Это не почва, и ее никогда не следует добавлять в горшок с орхидеями.

Орхидеи в дикой природе живут на деревьях. Их корни растут в бороздках коры и полностью открыты воздуху. Таким образом они получают очень мало удобрений и поливают их только во время дождя. Корни орхидей росли вне почвы миллионы лет, и важно обращаться с ними так же в домашних условиях.

Поскольку у вас, вероятно, нет дерева в вашей гостиной, вы можете имитировать дерево, используя кусочки коры в горшке. Кора действует хорошо и используется уже много лет. К сожалению, кора хорошего качества сейчас стоит очень дорого. К счастью, производители орхидей нашли хорошую замену — кокосовую шелуху — см. Рисунок выше. Кокосовая шелуха — это внешняя оболочка, которая остается после обработки кокосов. В нем много воздуха и воды, что и нравится корням орхидей. Кроме того, он очень медленно ломается, поэтому вам не нужно пересаживать его чаще, чем раз в 2 года.И это тоже относительно недорого.

Для орхидей использовались многие другие средства массовой информации, и некоторые веб-сайты продвигают их, но я предлагаю вам придерживаться кокосовой скорлупы. Когда вы покупаете носитель, убедитесь, что кусочки размером с ноготь вашего ребенка. Больше — это нормально, но гораздо меньше — слишком хорошо и не вмещает достаточно воздуха.

В последние несколько лет появилась новая тенденция в средствах массовой информации орхидей, что является проблемой. Производители упаковывают носители в белые непрозрачные пластиковые пакеты, чтобы вы не видели, что вы получаете.Не покупайте это. Вам нужен прозрачный пакет, чтобы вы могли видеть его содержимое и проверять размер кусков.

Если в смеси есть небольшое количество перлита или древесного угля, это тоже нормально, но вам это не нужно. Я использую чистую кокосовую шелуху уже 10 лет, и она отлично работает сама по себе.

ВНИМАНИЕ: Некоторые средства для орхидей продаются в белых пластиковых пакетах. Вы не можете видеть, что находится внутри, поэтому не покупайте их, поскольку это может не подходить для орхидей. Но продукт в прозрачных пакетах, чтобы можно было видеть куски курса.

Очистка орхидеи

Чтобы начать пересадку, достаньте орхидею из горшка. Отбросьте все старые носители и не используйте их повторно для орхидей. Его можно добавлять в сад или в почву других комнатных растений, но не используйте его для орхидей. Вероятно, вы обнаружите, что часть материала прилипла к корням. Попробуйте аккуратно поддеть его. Не тяните так сильно, чтобы повредить корень, но постарайтесь убрать большую часть его с растения.

Осмотрите корни. Если растение росло правильно, корни должны быть белого или зеленого цвета, твердыми и округлыми.У здоровых корней будет зеленая верхушка на месте роста. Сохраните все эти хорошие корни.

Пересаживание орхидей до наступления корневой гнили в

Ищите мертвые и умирающие корни. У всех орхидей есть старые отмирающие корни, но большинство из них должны быть здоровыми. Если корень черный или мягкий, он мертв. Если он белый, плоский и не имеет вещества, он мертв. Если вы видите морщины, вероятно, он умирает. Все мертвые и умирающие корни следует удалить.

На картинке выше зеленая стрелка показывает здоровый корень — красивый, желтовато-зеленый.Оставьте эти корни в покое.

Две фиолетовые стрелки показывают два умирающих корня. Они белого цвета, но становятся мягкими и мягкими. Если вы их чувствуете, они в основном плоские и пустые. На корнях начинают появляться черные точки и линии усадки. Тот, что справа, имеет черный наконечник, который означает, что он больше не растет. Их следует удалить, обрезав их до самого растения.

BL

Аресты и казни Кабала Глубинного государства | Survival

NUKE PRO: Разоблачение правды Антиядерная информация и ресурсы, а также планирование подготовки к стихийным бедствиям: http: // nukeprofessional.blogspot.com/ Конечно, ребята, это следует рассматривать как сатиру. Я не думаю, что мы действительно могли бы наказать Глубинное Государство таким образом, иначе они могут выпустить смертельный биоинженерный вирус, вызвать экономическую катастрофу и начать ужасающую расовую войну, разжигаемую ВСЕМИ СМИ, и никто никогда не подвергнет сомнению повествование. , и даже сейчас клоунское шоу телеведущих в масках в подвалах, спустя много времени после того, как COVID прошел своим курсом ………

Об этом сообщается в греческих новостях 4 июня 2020 г.

УДАР! Список арестов и казней известного глубинного государства

1.Эндрю Маккейб: арестован в Гуантанамо

2. Барак Обама: казнен

3. Микелла Обама (Большой Майк): казнен

4. Билл Гейтс: арестован и содержится под домашним арестом

5. Мелинда Гейтс: арестована и содержится под домашним арестом

6. Майк Пенс: арестован в Гуантанамо и может быть казнен, но без изменений.

7. Митт Ромни: арестован в Гуантанамо

8. Энтони Фаучи: был арестован, но помогает Трампу

9. Хума Абедин: казнен

10.Джон Бреннан: арестован в Гуантанамо,

11. Джордж Буш: казнен

12. Джордж Буш: казнен

13: Лора Буш: казнена

14: Джеб Буш: казнен

15: Дик Чейни: казнен

16: Джеймс Бейкер: казнен

17: Джеймс Клэппер: арестован в Гуантанамо

18: Хиллари Клинтон казнена

19: Билл Клинтон казнен

20: Джеймс Коми: арестован в Гуантанамо

21: Пол Райан: арестован в Гуантанамо

22.Дайан Файнштейн: экстрадирована в Китай

23: Эрик Холдер: арестован в Гуантанамо

24: Джон Керри: арестован в Гуантанамо

25: Лоретта Линч: арестована в Гуантанамо

26: Лиза Пейдж: арестована в Гуантанамо

27: ​​Тони Подеста: казнен

28: Джон Подеста: арестован в Гуантанамо

29: Саманта Пауэрс: арестована в Гуантанамо

30: Адам Чифф: арестован в Гуантанамо

34: Эрик Скмидт: арестован в Гуантанамо

35: Дебби Вассерман-Шульц: арестована в Гуантанамо

36: Джордж Сорос: казнен

37: Максин Уотерс: арестована в Гуантанамо

38: Салли Йейтс: арестована в Гуантанамо

39: Нэнси Пелоси: арестована в Гуантанамо

40: Чак Шумер: арестован в Гуантанамо

41: Рут Бейдер казнена

42: Петер Стшок: арестован в Гуантанамо

43: Элайджа Каммингс: казнен

44: Джасинда Адерн: арестована и содержится под домашним арестом

45: Том Хэнкс: казнен

46: Рита Уилсон казнена

47: Мадонна казнена

48: Леди Гага казнена

49: Опра Уинфри: арестована и содержится под домашним арестом

50: Эллен Дедженерес: арестована и содержится под домашним арестом

51: Стивен Спилберг: арестован и он

Грибковые комары и корневые мучнистые червецы

Растения и вредители взаимосвязаны, как арахисовое масло и желе.Если у вас есть 1-й, то через некоторое время появится и последний. Я лучше знаком с этими вредителями, поражающими комнатные растения, чем с растениями в ландшафте. Я говорю о грибных комарах и корневых мучнистых червецах (некоторые называют их почвенными мучнистыми червецами) и о том, что вы можете сделать, чтобы с ними бороться.

Это часть серии статей о вредителях растений, которую я сделал около 4 месяцев назад, а затем упал на этих 2. Упс — лучше поздно, чем никогда! Когда я занимался садоводством, я гораздо чаще встречал тлей и мучнистых червецов, паутинных клещей и белокрылок, а также чешуи и трипсов.В отличие от всех тех, которые вылупляются на самом растении, грибковые мошки и корневые мучнистые червецы вылупляются в почве. Управление у них очень разное.

Говорящие грибные мошки и корневые мучнистые червецы:

Грибные мошки:

Начну с грибных мошек. Взрослые особи, вылупившись в почве, летают, и вы можете их видеть. Им нравится влага, влажность и богатые вещества, такие как компост, гниющие листья и торфяной мох. Хотя их можно найти на улице возле сточных вод и в местах с плохим дренажем, мой ограниченный опыт работы с ними связан с комнатными растениями.Дома они вызывают заметное раздражение.

Полезно знать

Я не вхожу в жизненный цикл грибных комаров или корневых мучнистых червецов. Все, что я скажу по этому поводу, — это поймать их как можно раньше, потому что они размножаются как сумасшедшие. Если подождать, их будет намного труднее контролировать.

Это маленькие, крохотные черноватые сероватые летающие насекомые. 1/4 дюйма — это самый большой размер, который они получают, но большинство из них намного меньше этого. Все фотографии грибных комаров увеличены, поэтому я не беру ни одной фотографии.Для этого мне понадобится супертелеобъектив, но вы можете посмотреть несколько фотографий здесь.

Их часто путают с плодовыми мушками, но это два разных вредителя. Плодовые мухи обитают на кухне вокруг гниющих фруктов и овощей, они летают сильнее и немного крупнее грибных комаров. Грибные комары держатся довольно близко к растению, из которого вылупились.

Взрослые грибные мошки недолговечны. Они летают несколько дней, а затем умирают. Что делает их очень раздражающими, так это то, что, если они подходят к вам, они любят летать вам в нос, в уши и рот.Помните — они любят влагу! Они откладывают яйца у поверхности почвы, появляются личинки, из которых вылупляются летающие взрослые особи, а затем весь цикл начинается заново.

Полезно знать

Взрослые мухи не причиняют вреда растениям. Личинки, если их не лечить, могут повредить молодое или небольшое растение. Они редко наносят какой-либо ущерб устоявшемуся или крупному растению.

Симптомы были нанесены: Растение выглядит вялым, слабый рост и может терять листву, если заражение сильное.

Как предотвратить грибковые комары: Упростите жидкую любовь. Грибковые мошки хорошо себя чувствуют при чрезмерном поливе комнатных растений.

Борьба с грибными мошками:

За мою недолгую карьеру в качестве специалиста по уходу за внутренними растениями мы имели дело с множеством заражений грибковыми комарами. У большинства растений в качестве подкормки использовался мох, который еще больше препятствует их высыханию. Вот что мы сделали:

Убрал мох и убрал его в гаражный мешок на случай, если в него попали яйца или личинки.

Дайте растению как можно больше просохнуть. Липкие желтые ловушки были помещены внутри или рядом с растениями, чтобы задержать взрослых особей. Вы можете использовать их у себя дома, если они сводят вас с ума! Если клиенты действительно жаловались на грибных мошек, мы сразу приступили к промывке, но я рекомендую первую часть сушки, потому что растение, вероятно, уже влажное к этому моменту.

Смешайте раствор из 1 части чистой перекиси водорода ( без добавок) и 4-5 частей воды.Хорошо перемешайте и полейте растение, убедившись, что полностью промочили все части почвы. Перекись водорода будет шипеть; вот что убивает личинки и яйца.

Повторите через 2 недели для большего горшка; через 7-10 дней для небольшого горшка.

Другие эффективные методы, которые я слышал (но никогда не пробовал):

Масло от комаров в виде гранул, разбрызганное на поверхность почвы и политое водой.

Особый тип BT (называемый Bti), используемый в качестве слива.

Масло нима, используемое для смачивания (отзывы неоднозначные).

Нематоды. Это полезные насекомые, которые при попадании в почву начинают поедать личинок.

Корневые (или почвенные) мучнистые червецы

Корневых мучнистых червецов обнаружить намного сложнее, потому что они находятся в почве, и вы не увидите их, если не вытащите растение из горшка. Иногда некоторые из них могут прятаться у поверхности, но они любят болтаться внизу, питаясь корнями.

Корневые мучнистые червецы напоминают пятнышки белого хлопка или белый гриб.Присмотритесь (возможно, вам понадобится увеличительное стекло), и вы увидите, что они движутся медленно, а если нет, будут видны ноги.

Если растение растет в саду, вы сразу заметите его, когда вынете его из горшка. Верните его в детскую как можно скорее. Они, как и комнатные растения, могут переносить корневых мучнистых червецов от садовода или садового центра.

Симптомы были нанесены:

Корневые мучнистые червецы высасывают сок из растения, поэтому вы заметите задержку роста, меньшую силу роста, пожелтевшие или коричневые листья.Вы знаете — все типичные вещи, характерные для множества других проблем с растениями!

Как предотвратить корневой мучнистый червец:

Осмотрите свои растения сразу после того, как принесете их домой, вынув их из горшков.

Контроль корневых мучнистых червецов:

Единственный опыт, который у меня был с корневыми мучнистыми червецами, был в нашей теплице в Коннектикуте, когда я рос. У нас было много растений и саженцев, но душистая герань, зональная герань, пеларгония и стрептокарп все время от времени получали это.Я слышал, что им тоже подвержены суккуленты и африканские фиалки.

Вот что сделал бы мой отец:

Подколите как можно больше почвы.

Положить в пакет и выбросить в мусор. Не кладите его в сад или в компост.

Замочите корни, прикрыв их верхушку, в ведре или ванне с горячей водой.

Мой папа всегда говорил: «Не горячо, но и не обжигающе». Я немного исследовал это, чтобы увидеть, делал ли это кто-нибудь еще, чтобы я мог получить более требовательные временные параметры.Температура воды должна быть от 110 до 120 градусов по Фаренгейту. По сути, вы хотите, чтобы она была достаточно горячей, чтобы убить твари и их яйца, но не настолько горячей, чтобы повредить корни.

Оставьте растение в воде на десять минут.

Корневой мучнистый червец погибает почти мгновенно, но вы должны оставить его в покое.

Пересадите растение в свежую горшечную почву, присыпав кизельгуром.

Если там еще остались какие-нибудь из них или их яйца, это достанется.

Если вы снова помещаете растение в тот же горшок, не забудьте замочить горшок в кипящей горячей воде, чтобы избавиться от корневых мучнистых червецов, которые могут болтаться по бокам или дну. Также хорошенько помойте горшок.

Еще я слышал, чтобы они были эффективными:

Там есть пестициды, но я мало о них знаю. Будьте осторожны и не используйте слишком сильные вещества, потому что вы не хотите повредить корни.

С корневыми мучнистыми червецами обращаются иначе, чем с мучнистыми червецами, которые обитают на растении, поэтому даже не пытайтесь использовать садовое масло, инсектицидное мыло, масло нима и т. Д.

Бороться с вредителями — это не весело, но это часть выращивания растений.

Держите свои растения как можно более здоровыми, и они смогут лучше пережить любые заражения. Есть ли у вас что-нибудь другое, что было бы эффективно против грибных мошек или корневых мучнистых червецов? Поделись, пожалуйста!

Счастливого (без вредителей) садоводства и спасибо, что заглянули,

Вам также могут понравиться:

Пересадка растений: основы, которые нужно знать начинающим садоводам

Уборка комнатных растений: как и зачем я это делаю

Руководство по поливу комнатных растений

7 простых настольных и подвесных комнатных растений для начинающих

Этот пост может содержать партнерские ссылки.Вы можете прочитать наши правила здесь. Стоимость вашей продукции не будет выше, но сад Joy Us получает небольшую комиссию. Спасибо за то, что помогли нам распространить информацию и сделать мир более красивым!

Frontiers | Полные пластомные последовательности четырех видов орхидей: понимание эволюции орхидных и полезность горячих точек пластомных мутаций

Введение

Орхидные (орхидеи), самое большое семейство однодольных (Chase et al., 2003), насчитывает около 25000 видов 880 родов и пяти подсемейств. Они отделились от других однодольных около 112 миллионов лет назад (Givnish et al., 2015). Орхидеи распространены в основном в тропических и субтропических лесах. Их цветы (см. Рис. 1) характеризуются увеличенными лепестками (называемыми лабеллами) и цилиндрической структурой из слитого гинецея и пыльника (вместе называемого столбиком). Последний облегчает опыление насекомыми (Ramírez et al., 2007) и является отличительным и привлекательным для человека.

РИСУНОК 1. Филогенетические отношения между пятью подсемействами орхидей. Топология слева была предложена морфологическими исследованиями, которые утверждали монофилетическое родство между однотычинковыми орхидеями. Двунаправленная стрелка между Vanilloideae и Cypripedioideae показывает, что позиции этих двух подсемейств поменялись местами в молекулярных исследованиях, подчеркивая противоречие между морфологическими и молекулярными доказательствами. Фотографии слева: (A) Dendrobium и (B) Phalaenopsis из Epidendroidae, (C) Habenaria из Orchidoideae, (D) Vanilloide3 (D) Vanilloidea E) Paphiopedilum Cypripedioideae и (F) Apostasia Apostasioideae.

Исследования филогенетических взаимоотношений между пятью подсемействами орхидей: Apostasioideae, Cypripedioideae, Epidendroidae, Orchidoideae и Vanilloideae (sesu Cameron) долгое время вызывали споры. Основная дискуссия сосредоточена на эволюции количества тычинок. Раньше односторонние цветки считались морфологически более развитыми, чем двух- и трехтысячные (Vermeulen, 1966; Rasmussen, 1985; Szlachetko, 1995). Таким образом, в ранних морфологических исследованиях считалось, что три подсемейства с одной тычинкой, Epidendroidae, Orchidoideae и Vanilloideae, когда-то состояли из суперсемейства, отдельного от двух других подсемейств (Apostasioideae и Cypripedioideae) (Rasmussen, 1985; Szlachetko, 1995). ).Однако недавние молекулярные исследования (например, Górniak et al., 2010; Givnish et al., 2015; Kim HT et al., 2015; Lin et al., 2015) пришли к выводу, что Epidendroidae и Orchidoideae более тесно связаны с Cypripedioideae, чем к Vanilloideae (рис. 1), подразумевая, что одинарные орхидеи парафилетичны и что аналогичные однотычковые цветочные структуры являются следствием конвергентной эволюции.

Полные последовательности пластидного генома (пластома) семенных растений полезны и экономически эффективны для филогенетических и эволюционных исследований из-за их преимущественно однопородного наследования, плотного содержания генов и более медленной скорости эволюции изменений по сравнению с ядерными геномами (Wolfe et al., 1987; Друин и др., 2008; Смит, 2015). Эти особенности позволяют получать последовательности пластома из общей геномной ДНК с использованием технологий секвенирования следующего поколения (Nock et al., 2011; Kim K. et al., 2015). Филогеномика пластид, которая сравнительно анализирует комбинированные пластидные гены, широко использовалась для переоценки нескольких открытых филогенетических вопросов. Например, основные группы покрытосеменных (например, Jansen et al., 2007; Moore et al., 2010; Горемыкин и др., 2013) и голосеменных (e.г., Lin et al., 2010; Чжун и др., 2011; Wu et al., 2013) были повторно оценены с использованием этого метода.

Пластомы семенных растений обычно содержат четыре части: два больших инвертированных повтора (IR), которые разделяют оставшиеся области на большую единственную копию и малую единственную копию (SSC) области. Границы IR являются динамическими и считаются горячими точками мутаций, а также генетическими маркерами, полезными для изучения филогенетических вопросов (Wu et al., 2007; Wang et al., 2008; Downie and Jansen, 2015).Например, сравнительный анализ нескольких пластомов орхидей выявил различные паттерны соединений между областями IR и SSC (Chang et al., 2006; Jheng et al., 2012; Kim H.T. et al., 2015). Микогетеротрофные орхидеи, которые не фотосинтезируют, лишены функциональных генов ndh (Delannoy et al., 2011; Logacheva et al., 2011; Barrett, Davis, 2012). Однако сравнительные исследования пластомов также обнаружили вариабельную потерю / сохранение ndh генов среди различных фотосинтезирующих видов орхидей; например, только ndhB в Oncidium (Wu et al., 2010) и ndhE , J и C в Cymbidium , как было предсказано, кодируют функциональные белки ndh (Yang et al., 2013). Тем не менее, механизмы, которые лежат в основе взаимосвязи между сдвигами в границах IR у орхидей и изменчивой потерей / сохранением генов ndh , не ясны.

Пластомы — идеальные ресурсы для выбора горячих точек мутаций различных линий. Например, локус matK был использован для идентификации видов орхидей (Lahaye et al., 2008). Neubig et al. (2009) считали локус ycf1 более подходящим для низкоуровневых филогенетических исследований орхидей, поскольку вариабельность последовательностей этого локуса выше, чем универсальных локусов rbcL и matK . Недавно стал доступен сравнительный пластомный метод отбора мутационных горячих точек, который использует по крайней мере два полных пластома в пределах исследуемого рода для скрининга наиболее информативных регионов (например, Ahmed et al., 2013; Downie and Jansen, 2015).Это исследовано на многих группах цветковых растений. Например, Ахмед и др. (2013) оценили горячие точки мутаций в пластомах Colocasia . Downie и Jansen (2015) предположили, что комбинация trnD trnD + trnE trnT может представлять наибольшее количество информативных признаков среди видов Apiaceae. Однако пластомное исследование горячих точек мутаций не проводилось для всех пяти подсемейств орхидей.

Разнообразные паттерны соединений между областями IR и SSC и независимая потеря ndh генов привлекли пристальное внимание исследователей, что привело к публикации многочисленных пластом орхидей (например,г., Chang et al., 2006; Jheng et al., 2012; Ян и др., 2013). Однако большинство исследованных пластомов принадлежит подсемейству Epidendroidae. Чтобы оценить эволюцию подсемейств орхидей и их пластом на основе более полной выборки, мы исследовали пластомы трех ключевых видов орхидей из подсемейств Orchidoideae, Cypripedioideae и Vanilloideae и 67 пластидных кодирующих генов из Neuwiedia singapureana (Apostasioideana ). ) и Cypripedium japonicum (Cypripedioideae).Кроме того, для Dendrobium , одного из крупнейших и наиболее экономически важных родов Orchidaceae, было секвенировано лишь несколько пластомов (например, Luo et al., 2014). Следовательно, пластом Dendrobium moniliforme также был секвенирован, что может быть полезно для исследования горячих точек мутаций. В данном исследовании мы исследовали пластомы 41 вида орхидей. Включая наши четыре недавно секвенированных пластома, мы отобрали образцы 14 различных родов из всех пяти подсемейств орхидей.Мы сравнили их структурные изменения и горячие точки мутаций, чтобы определить уровень видов орхидей. Кроме того, ранее предложенные отношения между пятью подсемействами орхидей были повторно исследованы на основе филогеномики пластид. Создан сценарий эволюции тычинок орхидей.

Материалы и методы

Растительные материалы и экстракция ДНК

Для каждого вида было собрано 2 г свежих листьев от особей Cypripedium japonicum Thunb, Dendrobium huoshanense , D . loddigesii Rolfe, D . moniliforme (L.) Sw., Goodyera schlechtendaliana Rchb. f., Neuwiedia zollingeri var . singapureana (Wall. Ex Baker), Paphiopedilum armeniaclum и Vanilla aphylla Blume, выращенные в теплице Нанкинского педагогического университета. Тотальную ДНК экстрагировали с помощью набора Qiagen DNeasy plant mini Kit (Qiagen, Германия). Качество полученной ДНК измеряли на спектрофотометре NanoDrop 8000 (Thermo Scientific, Wilmington, DE, USA).Образцы ДНК, которые превысили пороговое значение (концентрации ДНК более 300 нг / мкл, A 260 / A 280 = 1,8–2,0 и A 260 / A 230 больше 1,7) были собраны для следующего поколения последовательность действий.

Секвенирование, сборка, окончательная обработка и аннотации пластома

С развитием технологий секвенирования следующего поколения многие высокопроизводительные методы теперь можно использовать для получения полных последовательностей пластома с использованием полногеномной последовательности платформы Illumina (например,г., Ким К. и др., 2015). В этом исследовании сборку пластома проводили с использованием CLC Genomics Workbench 6.0.1 (CLC Bio, Орхус, Дания). Для каждого вида было секвенировано примерно 3,7 ГБ 73 пар оснований чтения на анализаторе генома Illumina Genome Analyzer 2000 в Пекинском институте геномики. После удаления адаптеров чтение было обрезано с вероятностью ошибки <0,05 и de novo собрано на CLC Genomics Workbench 6.0.1. Контиги, которые имели> 30-кратную глубину секвенирования, искали с помощью blastn против пластомных последовательностей G . фумата (NC_026773). Соответствующие контиги со значениями E <10 -10 были обозначены пластомными контигами. Для D . moniliforme , G . schlechtendaliana , P . armeniaclum и V . aphylla , промежутки между пластомными контигами закрывали с использованием последовательностей ампликонов, полученных с помощью ПЦР со специфическими праймерами. Границы IR подтверждены ПЦР-анализами. Гены были предсказаны с использованием DOGMA (Wyman et al., 2004) и тРНКскан-SE 1.21 (Schattner et al., 2005). Точные границы предсказанных генов были подтверждены путем сопоставления их с их ортологами из других видов орхидей.

Идентификация синтенических локусов и количество элементов SSR

Сравнительный пластомный метод, который использует по крайней мере два полных пластома в пределах исследуемого рода, теперь доступен для мутационного отбора горячих точек (например, Ahmed et al., 2013; Shaw et al., 2014). Однако только 10 родов орхидей содержат два или более пластома (2 в Bletilla , 5 в Corallorhiza , 11 в Cymbidium , 2 в Dendrobium , 2 в Masdevallia , 3 в Phalaenopsis Goodyera , 2 в Cypripedium , 2 в Paphiopedilum и 2 в Vanilla ) (дополнительная таблица S1).Таким образом, последовательности межгенных и интронных локусов (далее «некодирующие локусы») были извлечены из этих 32 пластомов. Локусы размером менее 150 п.н. исключались. Мы идентифицировали синтенические локусы на основе соседних с ними генов; то есть локусы, фланкированные одними и теми же генами / экзонами в 32 пластомах, отобранных в пробу, были идентифицированы как синтенные. Элементы простых повторов последовательности (SSR), расположенные в синтенных локусах, были обнаружены с помощью GMATo с критериями, согласно которым «минимальная длина» для мононуклеотидных и многонуклеотидных SSR была установлена ​​на 8 и 5 единиц соответственно (Wang et al., 2013). Затем мы подсчитали все SSR-элементы синтенных локусов для каждого рода, и полиморфные SSR-локусы подсчитали один раз.

Оценка генетической изменчивости

Чтобы оценить вариабельность последовательностей (SV) между родственными видами, для оценки и сравнения использовались идентифицированные нами синтенные локусы. Всего мы сравнили 84 пары родственных видов, в том числе 1, 15, 55, 3, 1, 3, 6, 1, 1 и 1 пару в пределах Bletilla , Corallorhiza , Cymbidium , Dendrobium , Masdevallia , Phalaenopsis , Goodyera , Cypripedium , Paphiopedilum и Vanilla соответственно.Последовательности, сравниваемые между каждой парой, были выровнены с использованием MUSCLE 3.8.31 (Edgar, 2004) с опцией «уточнение». Парные нуклеотидные мутации и события indel подсчитывали с использованием DnaSP v5 (Librado and Rozas, 2009), за исключением инделей на 5′- и 3′-концах выравнивания. Мы использовали методы Shaw et al. (2005) и Downie and Jansen (2015) для расчета SV исследуемых локусов. Формула была следующей: SV = (количество нуклеотидных мутаций + количество событий indel) / (количество консервативных сайтов + количество нуклеотидных мутаций + количество событий indel) × 100%.

Строительство филогенетических деревьев

У орхидей потеря пластидных генов ndh независимо произошла среди разных родов (Lin et al., 2015). Усечение или полная потеря генов ndh может привести к затруднениям при выравнивании, вызванным высокими скоростями нуклеотидных замен или наличием множества делеций и вставок. Таким образом, мы извлекли только последовательности 67 генов, кодирующих пластидный белок, общих для 53 орхидей и восьми других однодольных растений (дополнительная таблица S1) (без ndh генов).Выравнивание последовательностей проводили с использованием MUSCLE. После удаления всех пробелов и неоднозначных сайтов выравнивание 67 генов было конкатенировано с использованием SequenceMatrix 1.8 (Vaidya et al., 2011). Разделы 67 сцепленных генов были проанализированы с помощью PartitionFinder v1.1.1 (Lanfear et al., 2012), и результат был включен в построение деревьев максимального правдоподобия (ML) и байесовского вывода (BI) с использованием RAxML 8.0.2 (Stamatakis, 2014) и MrBayes 3.2 (Ronquist et al., 2012) соответственно. Fritillaria taipaiensis и Lilium longiflorum были определены как внешние группы. Устойчивость дерева машинного обучения оценивалась с использованием 1000 реплик начальной загрузки. Мы выполнили два независимых прогона MCMC при анализе дерева BI. Каждый запуск давал миллион поколений. Мы собирали одно дерево на 1000 поколений. Первоначальные 25% собранных деревьев были выброшены как выгорающие, а оставшиеся были использованы для оценки апостериорной вероятности.

Результаты

Секвенирование и сборка пластома

Секвенирование парных концов Illumina дало приблизительно 3.7 Гб из 73 пар оснований для чтения для каждого вида. Сборка de novo содержит 39 055 контигов для D . moniliforme , 44 793 контига для G . schlechtendaliana , 10 613 контигов для P . armeniacum и 15676 контигов для V . афилла . После сравнения были проведены с использованием пластомных последовательностей G . fumata (NC_026773), было получено 38 контигов со значениями E <10 -10 и средней глубиной покрытия> 30 × для D . moniliforme , 83 контига для G . schlechtendaliana , 87 контигов для P . armeniacum и 47 контигов для V . афилла . Два контига (длина = 86 931 п.н. и 35 926 п.н.) привели к почти полному проекту генома для D . moniliforme . Для G использовали четыре контига длиной более 20 т.п.н. schlechtendaliana , а пять контигов (длиннее 20 т.п.н.) и три контига (длиннее 40 т.п.н.) использовали для сборки пластомов P . armeniacum и V . афиллы соответственно. После сборки и закрытия зазора были получены четыре полных пластома.

Пластомные характеристики четырех недавно секвенированных орхидей

Недавно секвенированные пластомы D . moniliforme (Epidendroidae), G . schlechtendaliana (Orchidoideae), P . armeniacum (Cypripedioideae) и V . aphylla (Vanilloideae) круглые с IR (т.е., IRA и IRB), разделенных большими единственными копиями и областями SSC (рис. 2). Их размер варьируется от 148 778 до 162 835 п.н., с содержанием GC от 35,02 до 37,54% (таблица 1). Эти четыре пластома орхидей различаются длиной IR от 25 983 до 33 641 п.н. Гены, расположенные в IR, также сильно различаются. ИП у обоих D . moniliforme и G . schlechtendaliana содержат небольшую фракцию гена ycf1 . Напротив, ИК-порт P . armeniacum включает три гена: ycf1 , rps15 и psaC . Это V . aphylla включает ycf1 , rps15 , trnL и частичный сегмент ccsA , хотя ycf1 мутировал с многочисленными стоп-кодонами (Рисунок 2).

РИСУНОК 2. Пластомы Dendrobium moniliforme , Goodyera schlechtendaliana , Paphiopedilum armeniacum и Vanilla. Только пластом G . schlechtendaliana проиллюстрирована и показана в виде круговой карты, на которой гены вне и внутри круга транскрибируются по часовой стрелке и против часовой стрелки соответственно. Три основных отдельных участка среди четырех пластомов сравниваются и изображаются в блоках (A – C) . Обратите внимание, что в блоке (C) различия в экспансии IR и потеря ndh генов привели к сильно различающейся длине областей SSC среди четырех отобранных пластомов орхидей.

ТАБЛИЦА 1. Характеристики четырех недавно секвенированных пластомов орхидей.

Среди четырех секвенированных пластомов орхидей только G . schlechtendaliana содержит полный набор из 11 пластидных генов ndh . Напротив, D . moniliforme и P . armeniacum усекли или потеряли 10 из них (работает только ген ndhB ; рис. 2). Функциональный ген ndh не обнаружен в пластоме V . aphylla (рисунок 2). Поскольку четыре секвенированных орхидеи принадлежат к четырем разным подсемействам, их отчетливая потеря / сохранение ndh генов отражает множественные случаи потери пластидных генов во время их эволюции. Кроме того, потеря пластидных генов ndh и экспансия IR вызвали резкое сокращение областей SSC. Например, длина области SSC в V . aphylla — это лишь одна восьмая от количества G . schlechtendaliana (рисунок 2).

По сравнению с пластомами, которые имеют полные наборы из ndh генов (дополнительная таблица S2), границы IR / SSC для Vanilla и Paphiopedilum расширились до крайне аномального положения. Мы определили степень расширения / сокращения IR на основе длины области от 5′-конца гена ycf1 до соединения IR и SSC. Двусторонний тест Манна-Уитни показал, что длины IR в пластомах Vanilla и Paphiopedilum значительно отличались от пластомов с 11 функциональными генами ndh ( P <0.05). Эти результаты показывают, что гены ndh играют важную роль в стабильности соединений IR / SSC.

Разнообразные горячие точки мутаций среди родов орхидей

Мы идентифицировали 68 синтенных некодирующих локусов. Также подсчитывали SSR в этих локусах (дополнительная таблица S3). В этих пластомах отношения SSR-содержащих локусов к SSR-отсутствующим локусам значительно (двусторонний точный критерий Фишера, все P <0,05) выше в SC, чем в IR-областях, что указывает на то, что распределение SSR в зависимости от их расположения в пластомах.Средние значения попарного межвидового SV сравнивали, и результаты показаны в дополнительной таблице S3. 68 синтенных межгенных спейсеров и интронов были отсортированы по локусам SC и IR в зависимости от их расположения. Наш анализ с использованием двустороннего теста Манна-Уитни показал, что во всех 10 исследованных родах орхидей локусы SC имеют значительно больший SV, чем локусы IR (все P <0,05) (дополнительная таблица S3). Более того, средний SV обратно коррелировал со средним содержанием GC во всех 10 родах орхидей (Спирмена r = -0.496 до -0,80, все P <0,01), что позволяет предположить, что сильно мутировавшие локусы также эволюционировали в сторону обогащения нуклеотидов AT. Чтобы определить, консервативна ли эволюция SV среди родов орхидей, мы провели тест корреляции 68 синтенических локусов между и внутри разных подсемейств. За исключением Cymbidium против Bletilla ( R = 0,767, P <0,01), значения SV 68 синтенических локусов в пределах Epidendroidae статистически не коррелировали ( Corallorhiza vs. Phalaenopsis , r = 0,238, P > 0,05), слабо коррелированные ( r = 0,238 до 0,488, все P <0,05) или промежуточно коррелированные ( r = от 0,513 до 0,675, все P <0,05). Более того, не было обнаружено строго коррелированной взаимосвязи между различными подсемействами ( Corallorhiza против Vanilla , r = 0,086, P <0,05, другие r = 0,243 до 0,675, все P <0.05). Эти результаты предполагают, что в пластомах орхидей эволюция SV зависит от рода.

На рис. 3 показаны 10 локусов с наибольшим SV для каждого рода. Эти локусы представляют собой исключительно горячие точки мутаций. Очевидно, что большинство из них содержат SSR. Однако ни одна из горячих точек не является общей для всех 10 родов, и только четыре из них ( 5′trnK-rps16 , trnS trnG , clpP psbB и rps16 trnQ ) присутствуют более чем в четырех исследованных родах Epidendroidae.Кроме того, среди этих четырех горячих точек только две, clpP psbB и rps16 trnQ , присутствуют в двух родах Cypripedioideae. Таким образом, мы делаем вывод, что горячие точки пластомных мутаций разнообразны среди родов орхидей.

РИСУНОК 3. 10 синтенных межгенных и интронных локусов с самой высокой генетической изменчивостью в пластоме от каждого из 10 исследованных родов орхидей. Арабская цифра, показанная наверху каждой серой полосы, обозначает количество элементов SSR в соответствующем локусе.Значения SD для Corallorhiza , Cymbidium , Dendrobium , Phalaenopsis и Goodyera показаны в дополнительной таблице S3.

Филогенетические отношения между пятью подсемействами орхидей

Мы провели филогенетический анализ 67 конкатенированных пластидных генов с разделами последовательностей или без них. Как ML, так и BI-деревья восстановили монофилию пяти подсемейств орхидей, независимо от того, были ли включены разделы последовательностей (рисунок 4 и дополнительная таблица S3).Однако без разделения деревья ML и BI были несовместимы в предполагаемых положениях Neottia и Epipogium . Как показано на дополнительном рисунке S1, дерево ML поместило как Neottia , так и Epipogium в Epidendroidae, тогда как эти два рода помещены как сестры Orchidoideae, а не другим видам Epidendroidae в дереве BI. Однако с разделением (дополнительная таблица S4) оба дерева согласованно поместили Neottia и Epipogium в пределах Epidendroidae (рисунок 4 и дополнительная таблица S4), и деревья больше не противоречили друг другу в своих топологиях (рисунок 4 и дополнительная таблица S1). .

РИСУНОК 4. Филогеномика пластид подсемейств орхидей на основе секционированного анализа. Показано только дерево BI, потому что его топология почти идентична топологии полученного дерева ML. Единственные различия — это отношения между видами Corallorhiza и , которые показаны в пунктирной рамке. Значения поддержки Clade в дереве — это поддержки начальной загрузки / апостериорные вероятности в процентах от RAxML / Mayas. 100% поддержка; -конфликт между ML-деревом и BI-деревом.Ветви, отмеченные знаком //, укорачиваются на 50%.

Apostasioideae, члены которого имеют несколько тычинок, являются самым ранним расходящимся подсемейством орхидей. Vanilloideae, хотя и состоит из одинарных тычинок, тесно связан с подсемейством с несколькими тычинками (например, Cypripedioideae), а не с двумя другими подсемействами с одной тычинкой (например, Epidendroidae и Orchidoideae). Таким образом, на основании проведенных нами филогенетических анализов, одночечковые орхидеи являются парафилетическими. Это говорит о том, что количество тычинок эволюционировало независимо, по крайней мере, дважды в течение эволюции орхидей.

Обсуждение

Расширение / сокращение IR связано с потерей ndh генов

У орхидей утраченные гены пластид ndh , как предполагалось ранее, функционально замещаются их предполагаемыми ядерными гомологами пластидного происхождения (Chang et al., 2006). Однако анализы ядерного транскриптома не смогли обнаружить полный набор из 11 ndh генов у некоторых видов орхидей, в пластидах которых отсутствуют ndh генов (Johnson et al., 2012; Su et al., 2013; Цай и др., 2013; Lin et al., 2015). Принимая во внимание заметную вариацию в потере / сохранении ndh генов среди четырех недавно выявленных пластомов (рис. 2), мы предполагаем, что в ходе эволюции орхидей произошло несколько событий потери ndh . Это хорошо согласуется с предположением о том, что потеря ndh генов произошла независимо среди родов и подсемейств орхидей (Kim H.T. et al., 2015; Lin et al., 2015).

Plastid ndh белки образуют комплекс, который присоединяется к циклическому переносу электронов в фотосистеме I (Martín and Sabater, 2010).Основываясь на существовании PGR5-зависимого пути циклического транспорта электронов и на том факте, что у мутантов с дефицитом ndh , растущих в благоприятных условиях, не наблюдалось никаких вредных эффектов, Ruhlman et al. (2015) пришли к выводу, что гены пластид ndh могут быть незаменимы в современных растениях. Тем не менее, потеря ndh генов привела к структурным изменениям в пластомах орхидей, как показал Kim H.T. и другие. (2015) и мы здесь.

Структура и содержание генов пластома микогетеротрофной орхидеи сильно варьируют у фотосинтезирующих орхидей (Delannoy et al., 2011; Логачева и др., 2011; Барретт и Дэвис, 2012). Наш сравнительный анализ показал, что пластомы Vanilla и Paphiopedilum также расширили свои IR до крайне аномального положения. Однако механизмы, лежащие в основе сдвига их ИК-границ, не ясны. Ким Х. и другие. (2015) предположили, что нестабильность соединений IR / SSC у орхидей сильно коррелирует с делецией гена ndhF . Наш двусторонний тест Манна-Уитни также показал, что гены ndh играют важную роль в стабильности соединений IR / SSC.Утрата полного набора из 11 пластидных генов ndh была зарегистрирована у различных фотосинтезирующих семенных растений, таких как гнетофиты (Braukmann et al., 2009; Wu et al., 2009, 2011), орхидеи (Chang et al., 2006; Wu et al., 2010; Pan et al., 2012; Lin et al., 2015), сосны (Braukmann et al., 2009; Wu et al., 2013), стройные наяды (Peredo et al., 2013 ) и сагуаро (Sanderson et al., 2015). За исключением сосен и сагуаро, у которых есть только одна копия IR, все упомянутые выше линии расширили свои IR, включив в него некоторые гены (т.е., ycf1 , rpl32 , trnL , rps15 , psaC или ccsA ), которые обычно расположены в областях SSC пластом семенного растения. Учитывая, что пластидные гены ndh были полезны для нестабильности соединений IR / SSC и что расширение IR является обычным для пластом, удаленных с ndh , мы делаем вывод, что смещение границ IR может быть связано с переменной потерей ndh Гены в пластомах Vanilla и Paphiopedilum .Поскольку расширение IR непосредственно вызывает дупликацию генов (Рисунок 2), может ли оно принести пользу адаптации, заслуживает дальнейшего исследования.

Разнообразные горячие точки мутаций среди родов орхидей

Было показано, что сравнение пластома облегчает скрининг горячих точек мутаций, используемых для внутривидовой дискриминации (Ahmed et al., 2013; Hsu et al., 2014) и филогенетические исследования на уровне видов (Shaw et al., 2014; Дауни и Янсен, 2015). Было показано, что у орхидей многочисленные некодирующие пластидные локусы полезны в филогенетических исследованиях на уровне видов.Например, некодирующие локусы rpl32-trnL , trnE-trnT , trnH-psbA , trnK-rps16 и trnT-trnL могут быть маркерами для идентификации видов Cymbidium et al., 2013), и trnS-trnG , psaC-ndhE , clpP-psbB , rpl16 интрон , rpoB-trnC , trnT-psbD c, accD cL- rb67 rpl32-trnL , ccsA-ndhD и ndhC-trnV могут быть полезны для Phalaenopsis (Shaw et al., 2014). Однако ни один из них не был обнаружен ни в IR пластомов орхидей, ни в локусах, представленных на рис. 3. Эти данные подтверждают мнение о том, что скорость замены пластид значительно ниже в IRs, чем в SC-областях (Wolfe et al., 1987; Смит, 2015; Ву и Чау, 2015).

Различные горячие точки мутаций использовались для филогенетического и идентификационного анализов у ​​видов орхидей, однако не предполагалось, что это различные горячие точки мутаций, общие для разных родов орхидей (например,г., Neubig et al., 2009; Ян и др., 2013; Луо и др., 2014). В этом исследовании наш корреляционный анализ показал, что SV между и внутри разных подсемейств орхидей не коррелированы или не сильно коррелированы, что предполагает, что в пластомах орхидей эволюция SV зависит от рода (дополнительная таблица S3). Кроме того, 10 лучших локусов, которые мы проверили как наиболее вероятно содержащие самую высокую степень генетической изменчивости у орхидей, весьма разнообразны (рис. 3). Эти результаты показывают, что слабо развивающийся локус в одном роде орхидей может быть довольно вариабельным локусом в другом роде.

Хотя очень вариабельные горячие точки мутаций разнообразны среди родов орхидей, мы предполагаем, что три локуса 5’trnK-rps16 , trnS trnG и rps16 trnQ могут быть мощными маркерами для родов Epideae. , и clpP psbB и rps16 trnQ могут быть полезны для Cypripedioideae по двум причинам. Три горячие точки 5′trnK-rps16 , trnS trnG и rps16 trnQ присутствуют в более чем четырех родах Epidendroidae, а горячие точки clpP16 rpsP16 rps trnQ присутствуют в двух исследованных родах Cypripedioideae (рис. 3).Кроме того, среди этих горячих точек 5′trnK-rps16 , trnS trnG и rps16 trnQ расположены в одной из трех наиболее вариабельных областей пластома, от matK до 3′trn , как определено Shaw et al. (2014) на основе сравнения некодирующих локусов среди разных родов растений. Наши результаты хорошо согласуются с Shaw et al. (2014) и Дауни и Янсен (2015). Эти авторы идентифицировали одни и те же сильно изменчивые локусы в нескольких разнородных линиях растений.

Наши результаты будут полезны при выявлении горячих точек мутаций, представляющих уровень подсемейства орхидей. Тем не менее, по-прежнему существует острая необходимость в тщательном обнаружении и характеристике локусов, специфичных для всех родов орхидей.

Эволюция подсемейств орхидей

Однако молекулярно-филогенетические исследования орхидей до настоящего времени не смогли прийти к согласию относительно размещения Cypripedioideae и Vanilloideae (Cameron et al., 1999; Freudenstein and Chase, 2001; Cameron, 2004, 2007; Górniak et al., 2010; Гивниш и др., 2015; Ким Х. и др., 2015). Недавно Гивниш и др. (2015) и Ким Х. и другие. (2015) реконструировали деревья ML 39 и 14 родов орхидей соответственно, используя конкатенированные нуклеотидные последовательности пластидных генов. Результаты нашего разбитого на деревья анализа (рис. 4) совпадают с их результатами в отношении взаимоотношений между пятью подсемействами орхидей и монофилии клады Epidendroidae – Orchidoideae – Cypripedioideae. Монофилия Epidendroidae, Orchidoideae и Cypripedioideae, которая убедительно подтверждается в наших анализах филогеномики пластид, также согласуется с рядом предыдущих исследований, в которых использовались расширенные выборки таксонов или различные молекулярные маркеры (например,г., Коццолино и Видмер, 2005; Górniak et al., 2010; Lin et al., 2015). Ни их, ни наши результаты не подтверждают точку зрения, предложенную морфологическими исследованиями (Vermeulen, 1966; Rasmussen, 1985; Szlachetko, 1995) о том, что одинарные подсемейства Epidendroidae, Orchidoideae и Vanilloideae являются монофилетическими. Более того, морфологические исследования также показали, что в процессе развития одиночные плодородные пыльники Vanilloideae не гомологичны пыльникам Orchidoideae и Epidendroidae (Freudenstein et al., 2002). Таким образом, мы делаем вывод, что одинарные орхидеи парафилетичны.

Общие взаимосвязи, обнаруженные в нашем разделенном анализе в пределах Epidendroidae, в значительной степени совпадают с таковыми из недавних исследований (например, Górniak et al., 2010; Freudenstein and Chase, 2015; Givnish et al., 2015; Kim HT et al., 2015) , при этом лишь некоторые роды поддерживаются слабо. Это может быть связано с отсутствием множества генов, связанных с фотосинтезом, у Corallorhiza , Epipogium и Neottia , что приводит к отсутствию большого количества данных по этим таксонам (Kim H.T. et al., 2015). Более того, неполная выборка таксонов, вероятно, также привела к непоследовательному размещению трибы Epidendreae и Sobralieae, обнаруженному в предыдущих исследованиях (Górniak et al., 2010; Freudenstein, Chase, 2015; Givnish et al., 2015) и в наших. Мы ожидаем, что расширение диапазона выборки таксонов улучшит разрешение филогении орхидей.

Заключение

Это исследование сообщает полные последовательности пластома четырех видов орхидей: D . moniliforme , G . schlechtendaliana , P . armeniaclum и V. aphylla . Эти четыре пластома различаются сдвигами границ IR и вариабельной потерей / сохранением ndh генов. Двусторонний тест Манна-Уитни показал, что гены ndh играют важную роль в стабильности соединений IR / SSC. Наш сравнительный анализ показал, что сдвиги границ IR могут быть связаны с переменной потерей ndh генов в пластомах Vanilla и Paphiopedilum .Более того, наш анализ показал, что горячие точки мутаций среди родов орхидей сильно варьируют. После тщательного изучения данных мы предполагаем, что три локуса 5′trnK rps16, , trnS, trnG и rps16, trnQ, могут быть мощными маркерами для родов Epidendroidae и . clpP — psbB и rps16 trnQ могут быть полезны для Cypripedioideae. Мы использовали другие виды орхидей и пластидные гены, чем те, которые использовались в предыдущих исследованиях, однако как наши, так и предыдущие результаты показывают, что однотычковые орхидеи являются парафилетическими.Представленные здесь данные будут полезны для установления филогенетических отношений между пятью подсемействами орхидей. Они предоставят информативный и ценный генетический ресурс видов орхидей для изучения изменений в структуре пластома, выбора мутационных горячих точек и реконструкции филогенетических деревьев.

Авторские взносы

XD: разработал исследование. SZ, JS и WL: проводили эксперименты при регулярных консультациях XD и ZN. ZN и QX: проанализировали данные. ЗН: написал рукопись.Все авторы одобрили окончательный вариант рукописи.

Финансирование

Эта работа была поддержана грантами Китайского национального фонда естественных наук (грант № 31170300 и 31670330) и приоритетной академической программой развития высших учебных заведений Цзянсу для XD.

Заявление о конфликте интересов

Авторы заявляют, что исследование проводилось в отсутствие каких-либо коммерческих или финансовых отношений, которые могут быть истолкованы как потенциальный конфликт интересов.

Благодарности

Мы благодарим г-на Хуанг Минчжун (Китайская академия тропических сельскохозяйственных наук) за его помощь в сборе образцов орхидей и фотографий. Мы также благодарим профессора Чау Шу-Миау и доктора Ву Чунг-Шиена из Academia Sinica за предоставленные предложения и комментарии.

Дополнительные материалы

Дополнительные материалы к этой статье можно найти в Интернете по адресу: https://www.frontiersin.org/article/10.3389/fpls.2017.00715/full#supplementary-material

РИСУНОК S1 | Пластидная филогеномика подсемейств орхидей на основе секционных анализов.На деревьях показаны только поддержки бутстрапа и апостериорные вероятности в процентах меньше 100.

Список литературы

Ахмед И., Мэтьюз П. Дж., Биггс П. Дж., Наим М., Макленачан П. А. и Локхарт П. Дж. (2013). Идентификация локусов хлоропластного генома, подходящих для филогеографических исследований с высоким разрешением Colocasia esculenta (L.) Schott (Araceae) и близкородственных таксонов. Мол. Ecol. Ресурс. 13, 929–937. DOI: 10.1111 / 1755-0998.12128

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Барретт, К.Ф. и Дэвис Дж. И. (2012). Пластидный геном микогетеротрофной Corallorhiza striata (Orchidaceae) находится на относительно ранних стадиях деградации. Am. J. Bot. 99, 1513–1523. DOI: 10.3732 / ajb.1200256

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Браукманн, Т. В., Кузьмина, М., Стефанович, С. (2009). Утрата всех генов пластид ndh у Gnetales и хвойных пород: степень и эволюционное значение для филогении семенных растений. Curr. Genet. 55, 323–337. DOI: 10.1007 / s00294-009-0249-7

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Кэмерон, К. М. (2004). Использование последовательностей пластидного гена psaB для исследования внутрисемейных взаимоотношений внутри орхидных. Мол. Филогенет. Evol. 31, 1157–1180. DOI: 10.1016 / j.ympev.2003.10.010

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Кэмерон, К. М. (2007). «Молекулярная филогенетика орхидных: первое десятилетие секвенирования ДНК», в Orchid Biology Reviews and Perspectives , Vol.IX, ред. Дж. Ардитти, Т. Кулл и К. М. Кэмерон (Нью-Йорк, Нью-Йорк: издательство New York Botanical Garden Press), 163–200.

Google Scholar

Кэмерон, К. М., Чейз, М. В., Уиттен, В. М., Корес, П. Дж., Джаррелл, Д. К., Альберт, В. А., и др. (1999). Филогенетический анализ Orchidaceae: данные нуклеотидных последовательностей rbcL . Am. J. Bot. 86, 208–224. DOI: 10.2307 / 2656938

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Чанг, К. К., Линь, Х.К., Лин, И. П., Чоу, Т. Ю., Чен, Х. Х., Чен, В. Х. и др. (2006). Геном хлоропласта Phalaenopsis aphrodite (Orchidaceae): сравнительный анализ скорости эволюции с травой и его филогенетические последствия. Мол. Биол. Evol. 23, 279–291. DOI: 10.1093 / molbev / msj029

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Чейз, М. В., Кэмерон, К. М., Барретт, Р. Л., и Фройденштейн, Дж. В. (2003). «Данные ДНК и систематика орхидных: новая филогенетическая классификация», в издании Orchid Conservation , ред. К.У. Диксон, С. П. Келл, Р. Л. Барретт и П. Дж. Крибб (Кота-Кинабалу: Natural History Press), 69–89.

Google Scholar

Коццолино, С., Видмер, А. (2005). Разнообразие орхидей: эволюционное следствие обмана? Trends Ecol. Evol. 20, 487–494.

PubMed Аннотация | Google Scholar

Деланной, Э., Фуджи, С., Колас де Франс-Смолл, К., Брандретт, М., и Смолл, И. (2011). Безудержная потеря генов у подземной орхидеи Rhizanthella gardneri подчеркивает эволюционные ограничения на пластидные геномы. Мол. Биол. Evol. 28, 2077–2086. DOI: 10.1093 / molbev / msr028

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Дауни, С. Р., и Янсен, Р. К. (2015). Сравнительный анализ полных пластидных геномов от Apiales: расширение и сокращение инвертированного повтора, перенос ДНК из митохондрий в пластиды и идентификация сильно расходящихся некодирующих областей. Syst. Бот. 40, 336–351. DOI: 10.1600 / 036364415X686620

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Друэн, Г., Дауд, Х., Ся, Дж. (2008). Относительные скорости синонимичных замен в митохондриальном, хлоропластном и ядерном геномах семенных растений. Мол. Филогенет. Evol. 49, 827–831. DOI: 10.1016 / j.ympev.2008.09.009

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Фройденштейн, Дж. В., и Чейз, М. В. (2001). Анализ митохондриальных последовательностей интронов nad1b-c у Orchidaceae: полезность и кодирование символов изменения длины. Syst. Бот. 26, 643–657.

Google Scholar

Фройденштейн, Дж. В., и Чейз, М. В. (2015). Филогенетические взаимоотношения у Epidendroidae (Orchidaceae), одного из величайших излучателей цветковых растений: прогрессирующая специализация и диверсификация. Ann. Бот. 115, 665–681. DOI: 10.1093 / aob / mcu253

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Фройденштейн, Дж. В., Харрис, Э. М., и Расмуссен, Ф. Н. (2002). Эволюция морфологии пыльников у орхидей: современные пыльники, наложенные поллинии и комплекс вандоидов. Am. J. Bot. 89, 1747–1755. DOI: 10.3732 / ajb.89.11.1747

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Гивниш, Т. Дж., Спалинк, Д., Эймс, М., Лайон, С. П., Хантер, С. Дж., Зулуага, А. и др. (2015). Филогеномика орхидей и многочисленные факторы их необычайной диверсификации. Proc. Биол. Sci. B 282, 2108–2111. DOI: 10.1098 / rspb.2015.1553

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Горемыкин, В.В., Никифорова, С. В., Биггс, П. Дж., Чжун, Б., Деланж, П., Мартин, В. и др. (2013). Эволюционный корень цветковых растений. Syst. Биол. 62, 50–61. DOI: 10.1093 / sysbio / sys070

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Горняк М., Паун О. и Чейз М. В. (2010). Филогенетические отношения с Orchidaceae на основе низкокопийного гена, кодирующего ядерное ядро, Xdh: соответствие результатам органелларной и ядерной рибосомной ДНК. Мол. Филогенет.Evol. 56, 784–795. DOI: 10.1016 / j.ympev.2010.03.003

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Jansen, R.K., Cai, Z., Raubeson, L.A., Daniell, H., Depamphilis, C.W., Leebens-Mack, J., et al. (2007). Анализ 81 гена из 64 пластидных геномов разрешает отношения у покрытосеменных и определяет эволюционные паттерны на уровне генома. Proc. Natl. Акад. Sci. США 104, 19369–19374. DOI: 10.1073 / pnas.07004

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Чжэн, К.Ф., Чен, Т.С., Лин, Дж. Й., Чен, Т. К., Ву, В. Л., и Чанг, К. С. (2012). Сравнительный геномный анализ хлоропластов фотосинтезирующих орхидей и разработка ДНК-маркеров для различения фаленопсисов и орхидей. Plant Sci. 190, 62–73. DOI: 10.1016 / j.plantsci.2012.04.001

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Джонсон, М. Т., Карпентер, Э. Дж., Тиан, З., Брускевич, Р., Беррис, Дж. Н., Карриган, К. Т. и др. (2012). Оценка методов выделения тотальной РНК и прогнозирование успеха секвенирования филогенетически разнообразных транскриптомов растений. PLoS ONE 7: e50226. DOI: 10.1371 / journal.pone.0050226

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ким, Х. Т., Ким, Дж. С., Мур, М. Дж., Нойбиг, К. М., Уильямс, Н. Х., Уиттен, В. М. и др. (2015). Семь новых полных пластомных последовательностей демонстрируют безудержную независимую потерю семейства генов ndh у орхидей и связанную с этим нестабильность границ области инвертированного повтора / небольшой единственной копии. PLoS ONE 10: e0142215. DOI: 10,1371 / журнал.pone.0142215

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ким, К., Ли, С. К., Ли, Дж., Ю, Ю., Янг, Т. Дж., Чой, Б. С. и др. (2015). Полные последовательности хлоропластов и рибосом для 30 образцов проливают свет на эволюцию видов генома Oryza AA. Sci. Отчет 5: 15655. DOI: 10.1038 / srep15655

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Lahaye, R., van der Bank, M., Bogarin, D., Warner, J., Pupulin, F., Gigot, G., et al. (2008). ДНК, кодирующая флору горячих точек биоразнообразия. Proc. Natl. Акад. Sci. США 105, 2923–2928. DOI: 10.1073 / pnas.0709936105

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ланфир Р., Калькотт Б., Хо С. Ю. и Гиндон С. (2012). Partitionfinder: комбинированный выбор схем разделения и моделей замещения для филогенетического анализа. Мол. Биол. Evol. 29, 1695–1701. DOI: 10.1093 / molbev / mss020

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Линь, К.П., Хуанг, Дж. П., Ву, С. С., Сюй, С. Ю. и Чау, С. М. (2010). Сравнительная геномика хлоропластов показывает эволюцию родов и подсемейств Pinaceae. Genome Biol. Evol. 2, 504–517. DOI: 10.1093 / GBE / evq036

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Лин, С. С., Чен, Дж. Дж., Хуанг, Ю. Т., Чан, М. Т., Даниэлл, Х., Чанг, В. Дж. И др. (2015). Расположение и транслокация генов ndh хлоропластного происхождения в семействе Orchidaceae. Sci.Отчет 5: 9040. DOI: 10.1038 / srep09040

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Логачева М. Д., Щелкунов М. И., Пенин А. А. (2011). Секвенирование и анализ пластидного генома микогетеротрофной орхидеи Neottia nidus-avis . Genome Biol. Evol. 3, 1296–1303. DOI: 10.1093 / GBE / evr102

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ло, Дж., Хоу, Б. В., Ню, З. Т., Лю, В., Сюэ, К. Ю., и Дин, X. Y. (2014). Сравнительные геномы хлоропластов фотосинтезирующих орхидей: понимание эволюции орхидных и разработка молекулярных маркеров для филогенетических приложений. PLoS ONE 9: e99016. DOI: 10.1371 / journal.pone.0099016

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Мур, М. Дж., Солтис, П. С., Белл, К. Д., Берли, Дж. Г., и Солтис, Д. Э. (2010). Филогенетический анализ 83 пластидных генов решает вопрос о ранней диверсификации эвдикотов. Proc. Natl. Акад. Sci. США 107, 4623–4628. DOI: 10.1073 / pnas.01107

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Нойбиг, К. М., Уиттен, В. М., Карлсвард, Б. С., Бланко, М. А., Эндара, Л., Уильямс, Н. Х. и др. (2009). Филогенетическая полезность ycf1 для орхидей: пластидный ген более вариабельный, чем matK . Plant Syst. Evol. 277, 75–84. DOI: 10.1007 / s00606-008-0105-0

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Нок, К.Дж., Уотерс, Д. Л. Е., Эдвардс, М. А., Боуэн, С. Г., Райс, Н., Кордейро, Г. М. и др. (2011). Последовательности генома хлоропластов из общей ДНК для идентификации растений. Plant Biotechnol. J. 9, 328–333. DOI: 10.1111 / j.1467-7652.2010.00558.x

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Пан, И. К., Ляо, Д. К., Ву, Ф. Х., Даниэлл, Х., Сингх, Н. Д., Чанг, К. и др. (2012). Полная последовательность хлоропластного генома кандидата в модельные растения орхидеи: Erycina pusilla применяется в тропическом разведении Oncidium . PLoS ONE 7: e34738. DOI: 10.1371 / journal.pone.0034738

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Передо, Э. Л., Кинг, У. М., и Лес, Д. Х. (2013). Пластидный геном Najas flexilis : адаптация к погруженной среде сопровождается полной потерей комплекса NDH у водных покрытосеменных. PLoS ONE 8: e68591. DOI: 10.1371 / journal.pone.0068591

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Рамирес, С.Р., Гравендел Б., Сингер Р. Б., Маршалл К. Р. и Пирс Н. Е. (2007). Датирование происхождения Orchidaceae от ископаемой орхидеи и ее опылителя. Природа 448, 1042–1045. DOI: 10.1038 / nature06039

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Расмуссен, Ф. Н. (1985). «Семейства однодольных — структура, эволюция и таксономия», в Orchids , ред. Р. Дальгрен, Х. Т. Клифорд и П. Ф. Йео (Берлин: Springer Verlag Press), 249–274.

Google Scholar

Ронквист, Ф., Тесленко, М., Марк, П. В. Д., Эйрес, Д. Л., Дарлинг, А., Хона, С. и др. (2012). MrBayes 3.2: эффективный байесовский филогенетический вывод и выбор модели в большом модельном пространстве. Syst. Биол. 61, 539–542. DOI: 10.1093 / sysbio / sys029

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Рулман, Т. А., Чанг, В. Дж., Чен, Дж. Дж., Хуанг, Ю. Т., Чан, М. Т., Джин, З., и др. (2015). Экспрессия NDH отмечает основные переходы в эволюции растений и выявляет координированную потерю внутриклеточных генов. BMC Plant Biol. 15: 100. DOI: 10.1186 / s12870-015-0484-7

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Сандерсон, М. Дж., Копетти, Д., Беркес, А., Бустаманте, Э., Шарбоно, Дж. Л., Эгиарте, Л. Е. и др. (2015). Исключительное сокращение пластидного генома кактуса сагуаро ( Carnegiea gigantea ): потеря набора генов ndh и инвертированного повтора. Am. J. Bot. 102, 1115–1127. DOI: 10.3732 / ajb.1500184

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Шаттнер, П., Брукс, А. Н., Лоу, Т. М. (2005). Веб-серверы tRNAscan-SE, snoscan и snoGPS для обнаружения тРНК и snoRNA. Nucleic Acids Res. 33, W686 – W689. DOI: 10.1093 / nar / gki366

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Шоу, Дж., Лики, Э. Б., Бек, Дж. Т., Фармер, С. Б., Лю, В., Миллер, Дж. И др. (2005). Черепаха и заяц II: относительная полезность 21 некодирующей последовательности ДНК хлоропластов для филогенетического анализа. Am. Дж.Бот. 92, 142–166. DOI: 10.3732 / ajb.92.1.142

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Шоу Дж., Шафер, Х. Л., Леонард, О. Р., Ковач, М. Дж., Шорр, М., и Моррис, А. Б. (2014). Полезность последовательности ДНК хлоропласта для самых низких филогенетических и филогеографических выводов у покрытосеменных: черепаха и заяц IV. Am. J. Bot. 101, 1987–2004. DOI: 10.3732 / ajb.1400398

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

вс, с., Chao, Y. T., Yen, S. H., Chen, C. Y., Chen, W. C., Chang, Y. C. A., et al. (2013). Orchidstra: интегрированная база данных функциональной геномики орхидей. Physiol растительных клеток. 54, е11. DOI: 10.1093 / pcp / pct004

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Шлачетко, Д. Л. (1995). Systema orchidalium. Fragm. Флорист. Геобот. Pol. 3, 1–152.

Google Scholar

Цай, В. К., Фу, К. Х., Сяо, Ю. Ю., Хуанг, Ю. М., Чен, Л.J., Wang, M., et al. (2013). OrchidBase 2.0: обширная коллекция цветочных транскриптомов Orchidaceae. Physiol растительных клеток. 54, е7. DOI: 10,1093 / pcp / шт 187

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Вайдья, Г., Лохман, Д. Дж., И Мейер, Р. (2011). SequenceMatrix: программное обеспечение конкатенации для быстрой сборки наборов данных с несколькими генами с набором символов и информацией о кодонах. Кладистика 27, 171–180. DOI: 10.1111 / j.1096-0031.2010.00329.x

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ван, Р. Дж., Ченг, К. Л., Чанг, К. К., Ву, К. Л., Су, Т. М. и Чау, С. М. (2008). Динамика и эволюция соединений инвертированных повторов и больших однокопий в хлоропластных геномах однодольных. BMC Evol. Биол. 8:36. DOI: 10.1186 / 1471-2148-8-36

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ван, X., Лу, П., и Луо, З. (2013). GMATo: новый инструмент для идентификации и анализа микросателлитов в больших геномах. Биоинформация 9, 541–544. DOI: 10.6026/97320630009541

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Вулф К. Х., Ли У. Х. и Шарп П. М. (1987). Скорость нуклеотидного замещения сильно различается в митохондриальной, хлоропластной и ядерной ДНК растений. Proc. Natl. Акад. Sci. США 84, 9054–9058. DOI: 10.1073 / pnas.84.24.9054

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ву, С.С., и Чау, С.М. (2015). Эволюционный застой в пластомах цикад и первый случай конверсии гена, обусловленной GC пластомом. Genome Biol. Evol. 7, 2000–2009. DOI: 10.1093 / GBE / evv125

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ву, С. С., Чау, С. М., и Хуанг, Ю. Ю. (2013). Филогеномика хлоропластов указывает на то, что Ginkgo biloba является сестрой саговников. Genome Biol. Evol. 5, 243–254. DOI: 10.1093 / GBE / evt001

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Wu, C.С., Лай, Ю. Т., Лин, К. П., Ван, Ю. Н., и Чау, С. М. (2009). Эволюция уменьшенных и компактных геномов хлоропластов (хпДНК) у гнетофитов: отбор в сторону более дешевой стратегии. Мол. Филогенет. Evol. 52, 115–124. DOI: 10.1016 / j.ympev.2008.12.026

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ву, С. С., Ван, Ю. Н., Сюй, К. Ю., Лин, К. П., и Чау, С. М. (2011). Потеря различных копий инвертированных повторов из геномов хлоропластов Pinaceae и Cupressophytes и влияние гетеротахии на оценку филогении голосеменных. Genome Biol. Evol. 3, 1284–1295. DOI: 10.1093 / GBE / evr095

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ву, С.С., Ван, Ю.Н., Лю, С.М., и Чау, С.М. (2007). Геном хлоропласта (хпДНК) Cycas taitungensis и 56 сП генов, кодирующих белок gnetum parvifolium: понимание эволюции хпДНК и филогении современных семенных растений. Мол. Биол. Evol. 24, 1366–1379. DOI: 10.1093 / molbev / msm059

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ву, Ф.Х., Чан, М. Т., Ляо, Д. К., Хсу, К. Т., Ли, Ю. В., Даниэлл, Х. и др. (2010). Полный хлоропластный геном Oncidium Gower Ramsey и оценка молекулярных маркеров для идентификации и разведения Oncidiinae.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *