Site Loader

Содержание

Болезни орхидей фаленопсис и их лечение

Как и любой живой организм на нашей планете красавица орхидея Фаленопсис тоже может заболеть. К счастью, в большинстве случаев мы можем помочь цветку выздороветь, и он продолжит радовать нас тропической красотой. Итак, посмотрим, как можно справиться с болезнями. Если исключить механические повреждения, то все болезни этого вида орхидей можно условно классифицировать по трем типам:

  • бактериальные;
  • грибковые;
  • вирусные.

Грибковыми недугами Фаленопсисы чаще всего страдают вследствие трех причин – перегрева, отсутствия вентиляции и переувлажнения. Идентифицировать грибковую болезнь можно по налету на листьях серого или белесого цвета, круглым пятнам или полоскам.

Самая распространенная грибковая болезнь – Филлостиктоз. Может проявляться и пятнами, и причудливыми рисунками. Далее уже могут появиться споры. В большинстве случаев орхидея сама справляется с недугом.

Если же пятна продолжают распространяться, требуется специальное лечение орхидеи Фаленопсис. Цветок изолируют, пораженные участки удаляют, а срезы посыпают либо толченым активированным углем, либо корицей. Инструменты необходимо продезинфицировать.

Среди вирусных недугов Фаленопсиса чаще всего встречается мозаика Цимбидиума, она провоцирует появление светлых пятен на листьях, которые со временем начинают чернеть. Лист быстро ослабляется и отпадает.

Вирус может поселиться на орхидее еще в момент его пребывания в магазине, а потом активизироваться при благоприятных обстоятельствах. Для лечения вирусных болезней орхидей применяются антибиотики широкого спектра и фунгициды.

Бактериальными болезнями Фаленопсисы обычно начинают страдать вследствие попадания в почву и на само растение бактерий, провоцирующих гниение. О наличии такого недуга свидетельствует почернение листьев, их отмирание и гнилостные процессы в корневой системе.

Как и в случае других заболеваний, орхидею нужно изолировать, удалить пораженные листья, а срезы продезинфицировать перетертым антибиотиком. Полив в этот период нужно сократить, а температуру воздуха в помещении снизить до двадцати градусов, чтобы бактерии не развивались. Если вовремя начнете лечение, орхидею удастся быстро вылечить.

Профилактика болезней Фаленопсисов

Хотя многие болезни этих орхидей и излечимы, все же лучше их развития не допускать. Для этого необходимо выполнить ряд условий:

  • Внимательно осмотрите растение еще при покупке в магазине. На листьях не должно быть никаких подозрительных пятен, бугорочков или разводов, листы должны быть сочными, глянцевыми и насыщенно зелеными.
  • Берегите орхидею от повреждений, поскольку именно через срезы и попадают бактерии и вирусы в растение.
  • Если растение таки повредилось, продезинфицируйте срез.
  • Правильно поливайте растение. Если грунт будет переувлажненных и вода начнет попадать в розетку листьев, не избежать грибковых заболеваний и процессов гниения.
  • Обеспечьте достаточное освещение Фаленопсиса, недостаток света быстро приведет к его гибели.
  • Регулярно подкармливайте орхидею специальными удобрениями.

Болезни Фаленопсиса и методы борьбы с ними, как правильно ухаживать за орхидеей

В комнатном цветоводстве наиболее распространенной орхидеей является Фаленопсис. Цветки орхидеи необычной формы и разнообразны по цветовой гамме. Растение отличается длительным периодом цветения. Статья расскажет об особенностях выращивания орхидеи, а также о болезнях Фаленопсиса и методах борьбы с ними.

Описание Фаленопсиса

Фаленопсис является травянистым растением, которое относится к семейству Орхидные. В природе можно встретить в горных лесах и равнинах на юго-востоке Азии и севере Австралии.

По внешнему виду такие орхидеи напоминают бабочку.

Листья у растения мясистые и кожистые, располагаются поочередно и собраны в розетку. За вегетационный период образуют 1-2 листа, которые отмирают с появлением новых. Длина листа может находиться в пределах 10-50 см в зависимости от вида Фаленопсиса.

Цветение

Стебель у растения вертикальный, укороченный. Цветоносы длинные, и пазушные, в основном ветвящиеся, на котором появляется большое количество крупных цветков. В зависимости от сорта и вида они могут быть разного оттенка, формы и размера.

Продолжительность цветения около 4 месяцев, однако, некоторые виды могут цвести несколько раз в год.

Виды

Орхидея Фаленопсис насчитывает более 70 разновидностей растений. Выделяют следующие распространенные виды Фаленопсиса:

Фаленопсис приятный. Орхидея среднего размера. Листья продолговатые, кожистые, мясистые, в ширину около 10-12 см, а в длину 50 см. На ветвистом цветоносе орхидеи может вырасти около 20-30 крупных бутонов с легким ароматом. Их диаметр составляет 8-10 см. Оттенок молочно-белый. Раскрываются цветки последовательно.

Фаленопсис оленорогий. Данный вид имеет сильно укороченный стебель. Свое название получило по форме цветоноса: уплощенный кончик, на местах образования почек имеются гребневидные выросты. На цветоносе может быть около 7-12 бутонов золотисто-желтого оттенка. На лепестках имеются красно-коричневые поперечные полоски.

Фаленопсис Стюарта. Пестролистное растение со слабым ароматом. Диаметр цветка около 5 см. Лепестки белые, у основания чашелистика красноватые пятнышки. Губа желтая, трехлопастная с мелкими пурпурными пятнами. Цветение данного вида наблюдается осенью и весной.

Фаленопсис Люддеманна имеет фиолетово-розовый цвет

Фаленопсис Люддеманна.  Листья светло-зеленого или салатового оттенка, эллиптические. Цветки фиолетово-розового цвета. Ближе к центру тон более насыщенный. Губа белая с пурпурными точками. Может цвести  целый год.

Фаленопсис Шиллера. Имеет сходство с Фаленопсисом приятным. Листья у орхидеи пестрые, на внутренней стороне серебристо-серые с пятнами темно-зеленого цвета, а на внешней красно-коричневого. Растение с многоцветковым цветоносом, длина может достигать одного метра. Цветки бывают темно-малиновые или светло-малиновые. Губа у основания желтая с маленькими красными точками. Цветение наблюдается в течение 2 месяцев.

Фаленопсис Сандера. Относится к числу редких и красивых видов. Листья зеленого цвета с пестрым рисунком. Цветоносы длинные, поникающие. На них супротивно размещаются 40-50 цветков, диаметр которых составляет 5-7 см. В отличие от других видов, Сандера может цвести круглый год. Цветовая гамма разнообразна.

Фаленопсис розовый. Самый миниатюрный вид. Листья темно-зеленые овальной формы, длиной 10-15 см. На цветоносе около 10-15 бутонов бело-розовых тонов. Губа маленькая и трехлопастная.

Многие цветоводы скрещивают между собой различные подвиды. Получаются красивые и долгоцветущие гибриды.

Пересадка

Пересадку орхидеи рекомендуется выполнять один раз в 3 года. При необходимости данную процедуру выполняют раньше указанного срока.

Фаленопсис

Фаленопсис пересаживают при повреждении корневой системы и если горшок для растения мал. Признаком здоровой орхидеи являются корни, растущие над горшком. Если же корни вытеснили субстрат, то необходимо пересадить растение.

Обычно орхидеи сажают в прозрачный горшок, чтобы наблюдать за состоянием корней. Для субстрата следует взять измельченную древесную кору, уголь, сфагнум и перлит. Готовую смесь можно приобрести в цветочном магазине.

Пересаживать растение следует только после цветения.

Процедура пересадки осуществляется следующим образом: из горшка аккуратно извлечь орхидею, отряхнуть с корней старый грунт и ополоснуть их в воде. Для этого следует погрузить горшок в воду на пару минут, а потом вынуть растение из емкости. В новом горшке нужно сделать дырочки для поступления воздуха в корневую систему.

Затем необходимо внимательно осмотреть корневую систему. При наличии гнилых и высохших корней, их следует удалить. Места срезов обработать толченым углем. Также можно воспользоваться антисептиком.

В новый горшок всыпать грунт, аккуратно уложить корни и пересыпать их субстратом. Далее прижать корни и сверху еще насыпать свежего грунта. Воздушные корни орхидеи следует обязательно оставить на поверхности. Точку роста растения и листья не нужно присыпать грунтовой смесью. В противном случае они могут загнить.

При удалении большей части корней орхидея может вываливаться из горшка. Чтобы этого не допустить следует закрепить растение деревянными палочками. После пересадки цветок не поливают 3 дня.

Мнение эксперта

Юлия Юрьевна

Имею большой сад и огород, несколько теплиц. Люблю современные методики культивирования растений и мульчирования почвы, делюсь опытом.

Задать вопрос

Отверстия в горшке нужно сделать не только снизу, но и с боков, чтоб обеспечить оптимальную циркуляцию воздуха. А именно прозрачная ёмкость нужна не только, чтоб видеть в каком состоянии корневая система, но и для того обеспечить нормальный процесс фотосинтеза. Если выбрать горшок из цветного пластики или вообще непрозрачный, то растение будет болеть и со временем погибнет.

Рекомендуем новый субстрат, даже если он был куплен в магазине, поддать температурной обработке. Можно или прожарить его в духовке, или проварить в кипящей воде. Это обезопасит вашу орхидею от грибка, так как его довольно сложно вылечить. Ещё одним сигналом для пересадки может стать появление белых пятен на субстрате. Они могут быть как свидетельством болезни, так и примесями из проточной воды. Поэтому поливать стоит очищенной, фильтрованной, постоявшей водой.

Способы размножения Фаленопсиса

Фаленопсис можно размножать тремя способами:

  • Семенами
  • «Детками»
  • Делением куста

Первый способ используется преимущественно селекционерами, чтобы получить новые сорта, виды и гибриды. В домашних условиях размножение семенами выполнить невозможно.

Фаленопсис

Размножение «детками» – наиболее распространенный способ получения орхидеи в домашних условиях. Растение должно быть здоровым, с хорошими корнями. Количество листьев не должно быть меньше четырех. Это важное условие при размножении Фаленопсиса.

«Детки» можно обнаружить в пазухах листьев. Они также появляются на цветоносе из спящих почек. Отделять новое растение можно только с появлением у «детки» своих воздушных корней и нескольких листочков.

Чтобы ускорить рост нового растения, можно стимулировать этот процесс несколькими способами:

  • Делением материнского куста
  • Использованием гормонального стимулятора
  • Делением цветоноса
  • Пересушиванием земли

Следует знать, что не все виды Фаленопсиса могут давать «деток».

При размножении делением куста следует использовать только взрослое растение. Фаленопсис должен иметь мощную розетку с 6 здоровыми листами и развитой корневой системой.

С помощью острого ножа срезать верхнюю часть растения так, чтобы осталось 3-4 листа и поверхностные корни. Места срезов следует обработать толченым и углем и высадить в уже подготовленный субстрат.

Уход

Чтобы орхидея долго радовало своими красивыми и яркими цветами, за ней следует регулярно ухаживать.

Для хорошего роста и развития растения необходимо создать комфортные условия. Температура в помещении, где располагается Фаленопсис, должна находиться в пределах 16-30 градусов.  

Цветок орхидеи

Чтобы стимулировать цветение, на протяжении нескольких недель следует понижать температуру до 12 градусов, а затем повышать до 20-24.

Влажность воздуха должна составлять 50-80%. При снижении данного показателя растение будет плохо цвести. Для повышения влажности опрыскивать орхидею нежелательно, так как это может привести к возникновению грибковых заболеваний.

Лучше взять глубокий поддон, насыпать гравий и налить воду. Поставить в емкость горшок с орхидеей так, чтобы он не касался уровня воды в поддоне. Это позволит создать влажный микроклимат.

Растение боится сквозняков, поэтому располагать его вблизи с потоком кондиционера не рекомендуется. Размещать растение следует на юго-востоке или юго-западе. Орхидею следует защищать от воздействия прямых солнечных лучей.

Фаленопсис не нуждается в частом поливе. В летний период поливать следует 2 раза в неделю. Если поверхностный слой сухой, это не значит, что растение требует влаги. Чтобы понять, нужно ли поливать или нет, многие цветоводы рекомендует вынимать часть субстрата и определять на ощупь и внешнему виду. Орхидею лучше недолить, чем перелить.

При отсутствии солнечных лучей Фаленопсис может обходиться без влаги в течение 2 недель. В большинстве случаев обильный полив и низкие температуры приводят к развитию различных заболеваний.

В зимнее время необходимо выполнять кратковременную просушку грунта на 1-2 дня. На недостаток влаги может указывать вялость листьев и малое количество корней.

В период вегетации Фаленопсис полезно подкармливать азотными удобрениями из расчета 1 г/л один раз в 2 недели.

Удобрения следует вносить только после полива. В качестве подкормки можно использовать специальные удобрения для орхидей.

Мнение эксперта

Юлия Юрьевна

Имею большой сад и огород, несколько теплиц. Люблю современные методики культивирования растений и мульчирования почвы, делюсь опытом.

Задать вопрос

Рекомендуем иногда поливать ваши орхидеи противогрибковыми средствами, даже если признаков заражения нет. Это может быть как слабый раствор марганца, так и специфические препараты, например, Превикур. 

Важно регулярно осматривать вашего питомца, особенно корневую систему. Корешки должны быть зелёными, а также упругими. Если они коричневатые, влажные, или же, наоборот, слишком сухие и сморщенные, стоит пересмотреть режим полива и провести профилактику болезней.

Летом нужно не только защищать цветок от сильного солнца, но и следить, чтоб он не перегрелся. Если орхидея опустила листики и они стали похожи на влажную ткань, то нужно перенести цветок в прохладное место, а часа через два начать поливать и увлажнять воздух. В ближайшее время от других стрессов стоит тщательно оберегать, или растение может даже погибнуть.

Если зимой растение стоит на окне, под которым расположены батареи, то их нужно накрывать плотной и толстой тканью, можно чтоб она была влажной. Сухой воздух очень вредит этим растениям. Он также провоцирует некоторые болезни и появление вредителей, например, паутинных клещей.

Болезни Фаленопсиса

Здоровое растение

При недостаточном или неправильном уходе  Фаленопсис может подвергаться различным заболеваниям. Наиболее распространенные болезни, которые поражают орхидею:

Антракноз. Заболевание характеризуется появлением на листьях Фаленопсиса маленьких круглых пятен коричневого цвета. С течением времени они увеличиваются в размерах с образованием черного налета.

Возникает антракноз при застаивании воды на листьях или высокой влажности в помещении. Чтобы избавиться от заболевания, необходимо удалить пораженные участки и обработать срезы активированным углем. В запущенных случаях следует воспользоваться химическими препаратами: Ридомил, Микосан, Топсин-М и др.

Фузариозная гниль. Листья начинают желтеть, а края листовой пластины скручиваться. Появляется заболевание при повышенной влажности и отсутствии циркуляции воздуха.

Растение следует обрабатывать Фундазолом в течение 10 дней. Для этого в раствор с водой опускать горшок с орхидеей 3 раза в день.

Мучнистая роса. Проявляется в виде белого налета на бутонах и листьях растения. В дальнейшем орхидея начинает сохнуть. Развивается мучнистая роса при создании парникового эффекта в помещении. Бороться с заболеванием необходимо при появлении первых признаков с помощью специальных химических препаратов.

Серая гниль. На листьях появляются темные пятна, покрытые пушистым налетом серого цвета. Постепенно гниль распространяется на почву. На цветках можно обнаружить коричневые точки.

Причиной серой гнили кроме высокой влажности может стать чрезмерное внесение азотных удобрений. Для устранения заболевания поврежденные места следует удалить, а потом опрыскать фунгицидами.

Бутон

О появлении вирусных заболеваний у Фаленопсиса будут указывать мозаичные пятна на листьях и лепестках. Обычно они небольшого размера и выглядят в виде полосок или стрелок. В данном случае растению ничем помочь нельзя. Орхидею нужно уничтожить, чтобы вирусное заболевание не перешло на другие растения.

Чтобы предотвратить появление у орхидеи Фаленопсис различных заболеваний, необходимо регулярно ухаживать за растениями, осматривать на наличие вредителей.

Вредители орхидеи

Фаленопсис могут поражать следующие вредители: паутинный клещ, щитовка, трипсы, мучнистый червец.

Обнаружить вредителей можно следующим образом: горшок с растением опустить в воду комнатной температуры на 5-10 минут. За это время все насекомые, находящиеся в субстрате, вылезут на поверхность.

Паутинные клещи можно обнаружить по крошечным точкам, которые оставляют вредители на листьях растения. Сначала листья начинают белеть, а затем высыхать. Иногда присутствует слегка заметная паутинка на листьях.

Вредителей необходимо собрать вручную и промыть вазон. Затем поставить горшок в емкость с водой и опрыскать растение инсектицидами.

Щитовка – это маленькое насекомое, которое в длину достигает всего лишь 5 мм. Она покрыта защитной пленкой – воском. Чтобы избавиться от щитовки, необходимо промыть, а затем обработать растение инсектицидными препаратами: Фитоверм, Актеллик и др. Повторная обработка осуществляется через 7-10 дней.

Фото цветения

Трипсы представлены черными жучками, которые не превышают 2,5 мм. Эти крошечные насекомые очень быстро передвигаются, оставляя за собой большое количество черных точек и серебристые дорожки.

Для устранения насекомых следует обработать орхидею и субстрат раствором Актеллика или Итоверма. В целях профилактики целесообразно опрыскать указанными препаратами растения, располагающиеся вблизи орхидеи. Повторить процедуру следует через неделю.

Мучнистый червец выглядит в виде белого пушистого комочка с длинными усиками. Это самое опасное сосущее насекомое. Заметить вредителя можно у основания растения, в прикорневой зоне.

Необходимо очистить Фаленопсис от сухих листьев. При обнаружении вредителя следует вручную с помощью зубочистки их собрать. Места, пораженные мучнистым червецом, обработать приготовленным мыльным раствором (в стакан воды добавить измельченный кусочек хозяйственного мыла). Затем воспользоваться инсектицидами.

Во время просмотра видео Вы узнаете о размножении Фаленопсиса.

Регулярно необходимо осматривать все растение, особое внимание уделить листьям и корневой системе. Только при правильном и должном уходе можно предотвратить появление заболеваний и вредителей.

Заметили ошибку? Выделите ее и нажмите Ctrl+Enter, чтобы сообщить нам.


Это меня удивило

Комнатные растения

Лечение болезней и заболеваний орхидей

13 января 2022

Экзотичность и огромное количество видов и сортов орхидей делают их одними из самых желанных для любителей комнатных растений. Их приобрести не проблема. Более того, можно выбрать редкие сорта и наслаждаться удивительными формами и окрасками цветов. Но главное при этом помнить о том, что неправильный уход или не подходящие условия выращивания могут привести к возникновению заболеваний.


Товары из этой статьи


Рассмотрим распространенные болезни орхидей фото и как с ними бороться

Чтобы орхидея не болела, необходимо соблюдать рекомендации по уходу и создать необходимые условия ее содержания. Но, в любом случае, необходимо знать врага в лицо и уметь распознавать первые признаки заболеваний и знать, как их быстро купировать.

Орхидея и заболевания из-за неправильного освещения

Многие виды этих культур требовательны к длительности и интенсивности светового дня. Если данным условием пренебречь, можно столкнуться с такими проблемами как:

· Уменьшение размеров листовых пластин.

· Развитие деформированных и слабых ростов, из которых не происходит формирование большой здоровой бульбы.

· Отсутствие цветение.

· Изменение интенсивности окраса: он становится более блеклым.

· Общая слабость и низкий иммунитет растения.

Стоит помнить о том, что орхидеи хотя и светолюбивые растения, но не выносят длительного воздействия прямых солнечных лучей. В таком случае на листовых пластинах могут возникать ожоги. После зимы к яркому весеннему солнцу растения должны адаптироваться постепенно.

При использовании дополнительных источников света (к примеру, фитоламп) необходимо следить за тем, чтобы между ними и цветами было достаточное расстояние. В противном случае на листовых пластинах могут появиться термические ожоги.


Орхидей болезни из-за несоблюдения правил полива

Многие проинформированы о том, чем болеют орхидеи, если их неправильно поливать. При этом, каждый вид, даже некоторые сорта одного вида могут нуждаться в разных объемах воды и периодичности.

В случае чрезмерного увлажнения могут появиться такие проблемы, как загнивание корневой системы и шейки растения. В результате такого процесса цветок спасти достаточно сложно.

В летний период многие сорта плохо реагируют на засуху и высокие температуры. Листья без своевременно полива начинают терять тургор и сильно истончаются. Растение начинает постепенно сбрасывать листовые пластины, начиная с нижних.

На листьях цветов могут появиться мокрые пятна. Причиной из возникновения является длительный контакт с водой или при воздействии низких температур и влаги. Мокрые пятна опасны для растения. Если они появились, необходимо сразу же удалить часть листа или лист в целом, если отек слишком большой. Срезы обрабатывают антисептиком.

Болезнь листьев орхидей из-за воздействия низкой температуры

В зимний период специалисты рекомендуют воздерживаться от приобретения цветов, поскольку во время их транспортировки большая вероятность повреждения и обморожения. Это можно заметить на листовых пластинах, которые покрываются мокреющими пятнами. В таком случае, чтобы спасти цветок, необходимо удалить все поврежденные участки листьев, срезы обрабатываются антисептическими средствами.

Обморожение может случиться и в домашних условиях. Если горшки стоят на подоконнике и окно часто открывается для проветривания в зимнее время, то это может стать причиной появления темных пятен.

Хиты продаж в магазине

Орхидея: болезни и лечение


При покупке орхидеи, чаще всего фаленопсиса, на листовых пластинах можно часто встретить небольшие бугорки округлой формы, которые имеют светлый окрас в центре. Это является симптомом грибковой болезни. Бугорки являются грибницей. Поэтому их не рекомендуется вскрывать. В противном случае споры разлетятся на другие цветы.

Наилучшим решением в таком случае является обработка этих участков фунгицидом. Чтобы решить проблему кардинально, можно обрезать часть листа с грибницами.

Вирусные инфекции

Вирусные заболевания возникают чаще всего тогда, когда растение сильно ослаблено. Опасны они из-за того, что в течение продолжительного времени болезни могут себя никаким образом не проявлять. Кроме этого, не существует средств или методов для лечения вирусов у орхидей. Если заболевание начало проявлять себя растение необходимо сразу локализовать от остальной коллекции. При благоприятных условиях для размножения вируса, пораженные цветы лучше всего утилизировать.

Чтобы избежать такой ситуации рекомендуется следить за условиями содержания цветов и не допускать:

· Резких перепадов температур и частых переездов кашпо.

· Кардинальной смены условий выращивания.

· Сильное изменение показателя влажности воздуха и т.д.

Чаще всего вирусные инфекции проявляются в виде кольцевой пятнистости на листовых пластинах. Она имеет более светлый окрас. При восстановлении нормальных условий выращивания такие пятна не пропадают.

Опасность таких заболеваний заключается в том, что поверх пятен вируса при неблагоприятных условиях содержания может поселиться грибковая инфекция.

Болезни корней орхидей


Корневая система орхидей требует особого внимания. При возникновении проблем с развитием и ростом цветка, причинами могут быть:

· Гниение. Это главный симптом того, что полив осуществляется неправильно. В результате происходит развитие бурой гнили, почвенных грибов, фузариоза, распространение вредителей. Из-за частого увлажнения корневая система не успевает просыхать. В случае начала гнили необходимо вытащить цветок из кашпо, очистить корневую систему от субстрата. Все гниющие участки необходимо удалить и продезинфицировать срезы. Далее необходимо просушить растение и посадить в новый субстрат спустя 8-12 часов. Следующий полив осуществляют не ранее, чем через 3-5 дней.

· Усыхание корней. Этот процесс запускается в случае длительной засухи. Для наращивания новых корешком используют средства-укоренители.

Пользуются спросом после прочтения

Первое сообщение о вирусе крапчатости гвоздики в орхидеях Phalaenopsis

В ноябре 2003 г. в округе Чанхуа в центральном Тайване были обнаружены две орхидеи Phalaenopsis из двух разных питомников с симптомами хлоротических колец на листьях. Собирали симптоматические растения и исследовали на наличие вирусов. Электронно-микроскопическое исследование ультратонких срезов тканей листьев симптоматических орхидей выявило изометрические вирионы диаметром 32 нм. Впоследствии изолят (обозначенный здесь как «92-орхидея-1») с частицами аналогичного размера был выделен из одной симптоматической орхидеи и установлен в Chenopodium quinoa (3).После непрямых тестов ELISA с использованием антисывороток против вируса крапчатости гвоздики (CarMV), вируса мозаики огурца, вируса кольцевой пятнистости цимбидиума, вируса кустистости томата, вируса хлороза стручкового перца, вируса некротической пятнистости недотроги, вируса пятнистого увядания томата, вируса кольцевой пятнистости томата и Вирус некроза лизиантуса , этот изолят положительно реагировал с антисывороткой, полученной против CarMV (1). Зараженные CarMV-TW и здоровые C. quinoa использовали в качестве положительного и отрицательного контроля соответственно. Чтобы дополнительно охарактеризовать этот вирус, консервативную область гена полимеразы (ORF1RT) кармовирусов амплифицировали с вырожденными парами праймеров, FJJ2003-17 (5′-TATATCTCGAGCAA(A/C)TAGGGG(G/T)GCCT) и FJJ2003. -18 (5′-TATAGGATCCCC(C/T)A(A/T)(A/G)GC(A/T)GTGTTCA), методом обратной транскрипции (RT)-PCR с использованием тотальной РНК, выделенной из листьев 92 -orchid-1-, инфицированные CarMV-TW и здоровые C. quinoa (3). Консервативный регион ORF1RT из 894 нуклеотидов изолята 92-orchid-1 (инвентарный номер GenBankHQ117873) имеет 97,1, 65,6, 61,7 и 63,5% идентичности нуклеотидов и 98,3, 70,2, 66,1 и 64,7% идентичности аминокислот с таковыми у CarMV (X02986), вируса разрыва цветка пеларгонии (NC_005286), вируса кактуса Сагуаро 9004 (NC_001780) и вирус разрыва цветков ангелонии (NC_007733) соответственно. Сравнение последовательности консервативной области ORF1RT показало, что 92-orchid-1 был кармовирусом, родственным CarMV. Анализ последовательности гена белка оболочки (CP) (GenBank Accession No. HQ117872), амплифицированный со специфическими парами CP-праймеров CarMV (FJJ2004-53: 5′-ACTGCGCTCGAGCTACTCTGTTGACAGTTCTA и 2004-54: 5′-ATATATGGATCCCGTCCCGCCGTGTGTGTCTA), показал, что изолят имеет от 95,8 до 98,8% идентичности нуклеотидов и от 96,8 до 98,9% аминокислот. те из 40 изолятов CarMV. Кроме того, ген CP имел 96,9, 97,0 и 98,8% идентичности нуклеотидов и 98,0, 95,7 и 98,3% идентичности аминокислот с изолятами из гвоздики (номер доступа в GenBank AY383566) (1), калла лилии (номер доступа GenBankHQ117870) (2) и лизиантус (инвентарный номер GenBank FJ843021), соответственно, на Тайване. Эти результаты позволили предположить, что этот изолят был CarMV, но отличался от трех вышеупомянутых изолятов и был обозначен как CarMV-Ph. В период с 2004 по 2007 г. дальнейшее обследование 280 растений Phalaenopsis с симптомами с помощью ИФА с использованием поликлональных антител к CarMV (1) показало, что примерно 4% протестированных растений были инфицированы. Насколько нам известно, это первое сообщение о CarMV у орхидей Phalaenopsis , и это явление имеет серьезные последствия для важных питомников и цветочной индустрии Тайваня.

Ссылки : (1) C. C. Chen et al. Завод Патол. Бык. 12:199, 2003. (2) C.C. Chen et al. Завод Дис. 87:1539, 2003. (3) Y.X. Zheng et al. Евро. Дж. Плант Патол. 121:87, 2008.

Характеристика ранней реакции орхидеи Phalaenopsis amabilis на инфекцию Erwinia chrysanthemi с использованием профиля экспрессии

Erwinia chrysanthemi является разрушительным бактериальным патогеном для Phalaenopsis amabilis и вызывает болезнь мягкого гниения за счет секреции ферментов, разрушающих клеточную стенку.Однако молекулярные механизмы, лежащие в основе взаимодействия P. amabilis с E. chrysanthemi, остаются неясными. В этом исследовании изучались ранние молекулярные события растения в ответ на атаку патогена. В очаге инфекции происходило изменение накопления активных форм кислорода и активности пероксидазы. Впоследствии было проведено систематическое секвенирование меток экспрессируемых последовательностей (EST) с использованием субтрактивной гибридизации подавления (SSH), чтобы получить первую глобальную картину сборки генов, участвующих в патогенезе. Большинство клонов SSH продемонстрировали высокую идентичность с генами, кодирующими белки, которые играют известную роль в окислительно-восстановительном гомеостазе, реакциях на патогены и метаболизме. Заметное количество клонов SSH кодировало факторы транскрипции WRKY, MYB и основной лейциновой молнии, что указывает на стимуляцию передачи внутриклеточного сигнала. Ген орхидеи, кодирующий транс-2-еноил-КоА-редуктазу (ECR), был наиболее распространенным транскриптом в библиотеке EST. ECR представляет собой фермент, катализирующий биосинтез очень длинноцепочечных жирных кислот (VLCFAs), и была получена полноразмерная кДНК гена ECR (PaECR1).Функциональный анализ PaECR1 был проведен с помощью индуцированного вирусом молчания генов, чтобы сбить экспрессию генов у P. amabilis. Растения с отключенным PaECR1 были более восприимчивы к инфекции E. chrysanthemi, что указывает на потенциальную роль ЖКОДЦ в патогенезе. Таким образом, профили экспрессии генов, чувствительных к патогенам, облегчили более полное представление о молекулярных событиях, лежащих в основе этого экономически важного взаимодействия растений и патогенов.

Болезней – Корончатая гниль | Уход за орхидеями

В сегодняшней статье об уходе за орхидеями я поделюсь несколькими советами по уходу за орхидеями с гнилью кроны.Возможно, вы видели растения в вашем местном продуктовом магазине, страдающие от гнили кроны (я вижу это слишком часто), или, возможно, вам приходилось лечить орхидею от гнили кроны в вашем собственном доме. Лечение корневой гнили может быть чрезвычайно трудным, но чем больше мы знаем об этом, тем лучше мы можем лечить и даже предотвращать ее!

Орхидеи подвержены различным видам гнили, включая гниль листьев, корневую гниль и гниль кроны. Моноподиальные орхидеи (фаленопсисы и ванды) наиболее подвержены гниению кроны — грибковой инфекции, вызываемой скоплением воды в центре (или кроне) растения.

Корончатая гниль может нанести огромный ущерб орхидее и требует немедленного лечения. Одним из решений является использование перекиси водорода (3%). Вы можете лечить корневую гниль перекисью водорода полной концентрации, повторяя это каждые 2-3 дня, пока гниль не перестанет шипеть и пузыриться при применении перекиси водорода. Посыпание корицей из кухонных шкафов также можно использовать для лечения грибка.

Конечно, профилактика – лучшее лекарство, даже если речь идет об орхидеях. Корончатая гниль на 100% предотвратима.Поливайте орхидеи в начале дня, чтобы растение успело высохнуть до наступления ночи и обеспечило растениям надлежащую циркуляцию воздуха. Самое главное, всегда находите время регулярно осматривать крону своих орхидей. Возьмите салфетку и промокните всю воду, скопившуюся в короне.

(Если вы решите удалить сильно поврежденные листья орхидеи, обязательно стерилизуйте лезвие для каждого среза.)

Хотите получать больше советов по уходу за орхидеями? Подпишитесь на рассылку бесплатных советов по уходу за орхидеями от Райана — вы узнаете все, что вам нужно, прямо от эксперта!

С наилучшими пожеланиями из солнечной Флориды,

Кэрол
Ухаживающая за орхидеями леди

Теги: Уход за орхидеями, Болезни, Советы по уходу и уходу за орхидеями, Проблемы, Вода

Эта запись подается в рубриках Уход за орхидеями, Вредители и болезни, Орхидея фаленопсис, Орхидея Ванда, Вода. Вы можете следить за любыми комментариями к этой записи через ленту RSS 2.0. Вы можете оставить отзыв или вернуться со своего сайта.

Характеристика фузариозных болезней орхидей, выращиваемых в коммерческих целях на Гавайях — Светт — 2015 — Патология растений

Введение

Коммерчески выращиваемые орхидеи являются ценным декоративным продуктом в США, приносящим годовой доход в размере 174 миллионов долларов США (Совет по сельскохозяйственной статистике, 2010 г.).Калифорния, Флорида и Гавайи являются основными штатами-производителями орхидей, на которые приходится 46, 24 и 7%, соответственно, оптового рынка горшечных и срезанных цветов вместе взятых, при этом Гавайи производят наибольшее разнообразие тропических видов и уникальных межродовых гибридов (Совет по сельскохозяйственной статистике). , 2010). Орхидеи являются одним из пяти основных сельскохозяйственных товаров на Гавайях и выращиваются на всех островах, хотя остров Гавайи является основным регионом выращивания орхидей (Гавайская служба сельскохозяйственной статистики, 2009 г. ).Производство разделено почти поровну между продажей горшечных растений и срезанных цветов, что составляет 47 и 53% отрасли соответственно, исходя из оптовых цен. Дендробиум орхидеи, безусловно, являются самой ценной культурой, на которую приходится c . 50% от общего объема производства орхидей (Leonhardt & Sewake, 1999; Служба сельскохозяйственной статистики Гавайев, 2009).

Упадок саженцев и взрослых растений становится основным ограничением коммерческого производства орхидей на Гавайях.Упадок распространен почти во всех питомниках по всему штату и значительно снижает товарность растений и производство многочисленных родов и межродовых гибридов из-за косметических повреждений, потери цветочных кустов и снижения силы роста растений.

Основные симптомы синдрома увядания включают деградацию корней, псевдостеблевой ожог, цветочный ожог, псевдобульбовую гниль и гниль влагалища (Uchida, 1999). Проростки могут довольно быстро увядать после появления симптомов, в то время как взрослые растения обычно страдают от потери биомассы корней и побегов, и их гибель может занять несколько месяцев или лет, в зависимости от возраста растения (Uchida, 1999). Учитывая сходство с солнечными ожогами и гнилью, связанными с чрезмерным поливом, эти симптомы часто связывают с абиотическими причинами.

Неясно, вызваны ли все эти симптомы одним и тем же или разными патогенами. В предварительных исследованиях Fusarium proliferatum часто обнаруживали на растениях с различными симптомами, что позволяет предположить, что этот вид может играть важную роль в синдроме упадка. Fusarium , патогены орхидей, зарегистрированы во многих местах по всему миру, в основном в тропиках и субтропиках.Пять видов Fusarium являются подтвержденными патогенами орхидей: F. fractiflexum , F. oxysporum , F. proliferatum , F. solani и F. subglutinans . Сообщалось, что все виды, кроме F. fractiflexum , вызывают заболевания как листьев, так и корней на различных родах орхидей, и часто можно обнаружить, что многие из этих видов встречаются одновременно в одном и том же месте, вызывая сходные симптомы заболевания (Benyon et номер . , 1996; Итикава и Аоки, 2000). Fusarium oxysporum был идентифицирован как причина гнили стебля Vanilla planifolia (ваниль) в Индонезии (Pinaria et al  ., 2010), корневой гнили ванили в Индии (Vijayan et al  ., 2012) и корневая гниль Cymbidium в Австралии (Benyon et al  ., 1996). Fusarium proliferatum был описан как лиственный патоген, вызывающий желтую и черную пятнистость листьев на орхидеях Cymbidium в Японии (Ichikawa & Aoki, 2000), и как возбудитель корневой гнили Cymbidium в Австралии (Benyon et al ., 1996). Сообщается, что Fusarium solani вызывает пожелтение листьев Phalaenopsis на Тайване (Chung et al ., 2011) и корневую гниль Cymbidium в Австралии (Benyon et al ., 1996). Fusarium subglutinans был описан как причина появления желтых пятен на Cymbidium в Японии (Ichikawa & Aoki, 2000), поражения листьев и псевдобульб на Cymbidium в Австралии (Broadhurst & Hartill, 1996) и корневой гнили Cymbidium в Австралии (Benyon и др. ., 1996). Fusarium fractiflexum — это недавно описанный вид, связанный с желтыми пятнами на листьях Cymbidium (Aoki et al ., 2001).

Целью этого исследования было: (i) провести полевые исследования по всему штату для выявления грибков, связанных с симптомами увядания орхидей, и оценить распространение видов и ассоциации хозяев, и (ii) оценить патогенность изолятов, выделенных из растений с симптомами, путем инокуляции Дендробиум орхидеи.

Материалы и методы

Полевой осмотр, симптомы заболеваний и выделения грибов

Образцы болезней были собраны в девяти питомниках орхидей в штате Гавайи в 2005 и 2006 гг. Образцы были получены в семи питомниках на острове Гавайи (около Хило) 24 мая 2005 г. (питомники 1, 2, 3 и 4), 2 Февраль 2006 г. (питомник 5) и 16 февраля 2006 г. (питомники 6 и 7, плюс повторное посещение питомников 2 и 3), а также из одного питомника на острове Оаху 2 марта 2005 г. и одного питомника на Мауи 5 сентября 2005 г.Питомники представляли собой либо оранжереи, либо открытые тени, покрытые тканью, а растения укореняли либо в каменных грядках, либо в горшках с камнями или мхом-сфагнумом на приподнятых скамейках. Обычно растения поливали опрыскиванием, хотя иногда применялось и капельное орошение. Ткани с симптомами были собраны со 186 растений, представляющих 29 родов орхидей и межродовых гибридов (далее гибриды). Для каждого рода или гибрида было собрано от 1 до 70 образцов растений (в среднем шесть растений; таблица 1).Образцы растений имели различные симптомы, многие из которых были характерны для болезней, вызванных Fusarium , и все они, по предварительным исследованиям, оказались частью синдрома упадка. Эти симптомы включали гниль псевдобульб, ожог побегов, ожог листьев, крапчатость/пятнистость листьев, пожелтение листьев, ожог и пятнистость цветков (рис. 1).

Таблица 1. Заболеваемость видами Fusarium на 186 растениях с симптомами гнили, фитофтороза и пятнистости из 29 родов и гибридов орхидей на Гавайях в 2005 и 2006 гг.
Питомник Образцы растений №растенийb
Род/гибрид п F. proliferatum Ф. Солани Ф.оксиспорум F. subglutinans -подобный (FS-A и FS-B)
Оаху 1 Дендробиум 38 13 1 3 0
Онцидиум 4 1 0 0 0
Все сорта 42 14 (33%) 1 (2%) 3 (7%) 0
Мауи 1 Дендробиум 24 0 1 0 5
Милтония гибрид 10 0 1 1 1
Онцидиум гибрид 9 0 0 0 1
Все сорта 43 0 2 (5%) 1 (2%) 7 (16%)
Гавайи 1 Brassolaeliocattleya 14 9 7 1 0
Эпидендрум гибрид 1 0 0 0 0
Хелсия 2 1 1 0 0
Лелиокатония 2 2 0 0 0
Фаленопсис 2 2 1 0 0
Потинара 8 6 4 0 0
Софролаэлиокаттлея 3 1 2 0 0
Васкостилис 1 1 0 0 0
Все сорта 33 22 (67%) 15 (45%) 1 (3%) 0
Гавайи 2 Аскоценда 1 1 0 1 0
Дендробиум 7 5 0 0 0
Грамматофиллум 2 2 0 0 0
Милтасия 1 0 1 0 0
Мокара 8 6 0 1 1
Одонтоглоссум 3 2 2 2 0
Ринхостилис 1 0 0 0 0
Все сорта 23 16 (70%) 3 (13%) 4 (17%) 1 (4%)
Гавайи 3 Буррагара 3 0 0 3 0
Вуйльстекеара 5 0 0 4 0
Все сорта 8 0 0 7 (88%) 0
Гавайи 4 Брассокаттлея 1 1 1 1 0
Brassolaeliocattleya 2 2 2 2 0
Лаэлиокаттлея 2 2 1 1 0
Софролаэлиокаттлея 1 1 0 0 0
Все сорта 6 6 (100%) 4 (66%) 4 (66%) 0
Гавайи 5 Неизвестный гибридc 12 6 (50%) 4 (33%) 3 (25%) 0
Гавайи 6 Каттлея 1 1 0 0 0
Дендробиум 1 1 0 0 0
Эпидендрум 2 1 0 0 0
Грамматофиллум 1 1 0 0 0
Одонтоцидиум 4 0 0 3 1
Все сорта 9 4 (44%) 0 3 (33%) 1 (11%)
Гавайи 7 Беаллара 1 0 1 1 1
Кольманара 3 2 0 3 1
Дендробиум 2 0 0 0 1
Мильтонидий 1 0 0 0 0
Одонтоглоссум 2 0 0 0 1
Онцидиум 1 0 0 0 1
Все сорта 10 2 (20%) 1 (10%) 4 (40%) 5 (50%)
Всего №островов 3 2 3 3 2
Всего № питомников 9 7 7 9 4
Всего №родов и гибридов 29 19 12 13 9
Всего № (%) растений 186 70 (38%) 30 (16%) 30 (16%) 14 (8%)

Симптомы, вызванные видами Fusarium в тестах на патогенность (a–d) и связанные с Fusarium в полевых условиях (e–j). а) пятнистость молодых листьев; (b) псевдостеблевая верхушечная гниль, характеризующаяся гнилью основания листьев и хлорозом, вызванная F. proliferatum ; (c) псевдостеблевая гниль основания и хлороз листьев, вызванные FS-B; (d) крупный план гнили основания псевдостебля, вызванной FS-B; (e) гниль влагалища Vuylstekeara молоди; (f) лепестковая пятнистость и пятнистость цветка Dendrobium ; (g) гниль цветоносов Mokara ; (h) корневая и лиственная гниль Odontoglossum молоди, приведшая к гибели растения; (i) корневые, корневищные и псевдобульбовые гнили зрелого гибрида Cattleya , приведшие к гибели растений; (j) корневая гниль молоди Phalaenopsis .

Ткань хранили до 3 дней при 20°C перед обработкой. Отдельные очаги или участки некроза вырезали из ткани с симптомами, промывали в мыльной воде, разрезали на c . 5–10 мм 2 штук, и погружали в гипохлорит натрия (NaOCl) различной концентрации в зависимости от типа ткани: цветы в 0,15% NaOCl на 5 с; листья, корневища, влагалища, цветоносы и псевдобульбы в 0,25% растворе NaOCl в течение 10 с; и укореняют в 0,6% растворе NaOCl в течение 30 с. Образцы тканей помещали на 1% водный агар (WA) и инкубировали при комнатной температуре (23–25°C) с c . 12 часов окружающего света на срок до 2 недель. Отдельный кончик гифы от каждого гриба, выходящего из пораженной ткани, переносили на чашку с 10% агаром с овощным соком (VA; 100 мл сока Campbell’s V8, 0,24 г карбоната кальция, 11 г агара USBC, 900 мл деионизированной воды). Отдельные споры изолятов Fusarium переносили из колоний на ВА на свежие чашки с ВА. Все культуры выращивали в течение 5–10 дней при постоянном флуоресцентном освещении при 23–25 °C, а затем хранили в скошенных ВА 15 см при 23–25 °C.

Морфологическая характеристика

Все изоляты, полученные из ткани с симптомами, выращивали на ВА при постоянном освещении при 23–25°C в течение 5–40 дней и относили к роду на основании морфологических критериев (Hanlin, 1990; Barnett & Hunter, 1998; Watanabe, 2002). Изоляты, признанные принадлежащими к роду Fusarium , впоследствии инкубировали на WA в тех же условиях, что и выше. Некоторые изоляты также культивировали на агаре из листьев гвоздики (CLA, т.е. WA с 4–6 стерильными кусочками листьев гвоздики, помещенными на поверхность) или картофельно-декстрозным агаром (PDA; 39 г L -1 картофельно-декстрозного агара Difco, 1 г L -1 Bacto агар) для дальнейшего исследования. Таксономия Leslie & Summerell (2006) использовалась для идентификации видов Fusarium на основе морфологических характеристик.

Анализ последовательности

Изоляты, идентифицированные на основании морфологии как F. oxysporum (четыре изолята), F.solani (четыре изолята), F. subglutinans (четыре изолята) или F. proliferatum (один изолят) выращивали в течение 5 дней на 10% ВА при 24°C при постоянном флуоресцентном освещении. Приблизительно 50 мг мицелия и спор собирали с поверхности одной чашки с помощью стерильного шпателя, а ДНК экстрагировали с помощью набора DNeasy Plant Mini (QIAGEN). Праймеры ef1 и ef2 (O’Donnell et al. , 1998) использовали для амплификации c . 690 п.н. гена, кодирующего фактор элонгации трансляции (TEF) 1 α , с помощью ПЦР в термоциклере Mastercyclergradient 5331 (Eppendorf).Условия ПЦР включали начальную денатурацию в течение 2 мин при 94 °C, затем 35 циклов денатурации при 94 °C в течение 30 с, отжиг при 50 °C в течение 30 с и удлинение в течение 30 с при 72 °C, с окончательным удлинением при 72°C в течение 2 мин и конечной температуре хранения 4°C. Продукты ПЦР клонировали в течение 12 часов после амплификации с использованием векторной системы I pGEM-T Easy (Promega). Последовательности были созданы с обратным праймером SP6 с использованием анализатора ДНК ABI 3730 и сравнены с последовательностями известных видов Fusarium путем бластного поиска в базе данных последовательностей Fusarium -ID (http://isolate.Fusariumdb.org/index.php; Гейзер и др. ., 2004; Park и др. ., 2011).

Тесты на патогенность

Один изолят FS-B и четыре изолята F. proliferatum , выделенные из листовых тканей с симптомами, были проверены на патогенность на Dendrobium сорта UH 800 (Jaquelyn Thomas ‘Uniwai Mist’, амфидиплоидный гибрид; Leonhardt & Sewake, 1999 ). Молодые формирующиеся листья (обычно три) на 18-24-месячных растениях опрыскивали до стекания водной суспензией 10 9 1014 6 спор мл -1 .Споры получали из культур, выращенных на ВА (описано выше) в течение 3 сут, суспендировали в стерильной воде и фильтровали через два слоя стерильной марли. Концентрацию спор регулировали на основе подсчета спор, проведенного с помощью гемоцитометра. Инокулированные растения инкубировали в течение 48 ч при 24°C и относительной влажности 100%, а затем переносили в теплицу, где их содержали в клетках с затененной сеткой при температуре от 25 до 27°C в течение 8 недель.

С недельными интервалами после инокуляции каждое лечение изолятом оценивали на основе доли инокулированных растений, у которых были симптомы (заболеваемость), и тяжести заболевания, которая была количественно определена с использованием наложения прозрачной сетки для оценки процентной площади листьев с симптомами на каждом из трех самых молодых листьев, открытых во время инокуляции. В конце каждого испытания ткань листьев и псевдостеблей с симптомами обеззараживали и помещали на WA, как описано выше, для подтверждения выделения инокулированного изолята. Во всех тестах имитацию инокуляции водой использовали для контроля влияния окружающей среды. Каждым изолятом инокулировали пять растений, и эксперимент проводили дважды.

Анализ данных

Результаты тестов на патогенность оценивались на основании частоты и условной тяжести заболевания.Данные о заболеваемости из двух тестов рассматривались как повторения в дисперсионном анализе (анова), а значимость средних различий оценивалась с использованием теста Тьюки, реализованного в r v. 2.13.0. Данные об условной серьезности анализировали с использованием критерия анова и Тьюки на основе наиболее сильно пораженных трех самых молодых листьев на каждом растении, у которого были симптомы. Растения, которые оставались бессимптомными, были исключены из этого расчета.

Результаты

Полевые исследования

На основании морфологических критериев было идентифицировано 665 изолятов грибов, из которых 531 представляли собой вида Fusarium . изолята Fusarium были выделены из 52 % отобранных растений (97 из 186) и из 97 % (28 из 29) исследованных родов и гибридов орхидей (таблица 1). В дополнение к изолятам Fusarium , другие потенциально патогенные грибы/грибоподобные организмы были выделены из 17% образцов растений и включали виды родов Colletotrichum , Botrytis , Pseudocercospora , Rhizoctonia и . . В 30 из 186 образцов растений (16%) грибы (или любые другие микробы) не были обнаружены, что указывает на то, что симптомы могли быть вызваны вирусными заболеваниями или абиотическими факторами.

Восемь видов Fusarium были идентифицированы на основе морфологических критериев: F. proliferatum (38% растений), F. oxysporum (16%), F. solani (16%), F. subglutinans (8%) (таблица 1), F. culmorum (<2%), F. sporotrichioides (<2%), F. avenaceum (<2%) и F. sambucinum (<2%). %). Кроме того, 20 изолятов Fusarium не могли быть достоверно идентифицированы как виды на основе морфологии. Fusarium proliferatum был не только наиболее часто выделяемым видом, но и ассоциировался с наибольшим количеством родов/гибридов орхидей (таблица 1). Тем не менее, F. oxysporum был наиболее распространенным, поскольку был единственным видом, обнаруженным во всех питомниках, обследованных на всех островах (таблица 1). Fusarium solani также был обнаружен на всех островах, но в меньшем количестве питомников (таблица 1). Изоляты, подобные Fusarium subglutinans , были обнаружены в четырех питомниках (40%) и были выделены из девяти родов/гибридов (таблица 1).В этом исследовании многие вида Fusarium часто были выделены из одних и тех же родов и гибридов орхидей (19 родов/гибридов, связанных с несколькими видами), а также из одних и тех же образцов растений (35 из 186 образцов растений были колонизированы двумя или более видами). ), часто из той же области некроза.

Идентичность F. proliferatum , F. solani и F. oxysporum была подтверждена на основании частичных последовательностей TEF, которые на ≥99 % совпадают с одним или несколькими образцами в базе данных Fusarium ID (таблица 2). .Четыре предполагаемых изолята F. subglutinans наиболее точно соответствовали одному из двух неохарактеризованных видов в комплексе видов Gibberella fujikuroi : NRRL 31654 (два изолята, 99% гомологии для обоих) и NRRL 25204 (два изолята, 99–100% гомологии). ; Таблица 2). Изоляты, которые соответствовали NRRL 25204, также имели 99% гомологии с бегониями Fusarium begoniae (таблица 2). Однако считается, что оба образца представляют неохарактеризованные виды на основе мультигенных генеалогий (O’Donnell et al ., 2000). Изоляты орхидей, тесно связанные с группой NRRL 25204, обозначались как FS-A, а изоляты, относящиеся к группе NRRL 31654, обозначались как FS-B (таблица 2).

Таблица 2. Идентификация видов Fusarium на основе морфологических критериев и последовательности ДНК
Виды на основе морфологии Виды на основе последовательности TEFa НРРЛ/ФД Длина последовательности (п.н.) Гомология последовательностей (%)
Фузариоз оксиспорум Ф.оксиспорум НРРЛ 25509 597 99
F. oxysporum Ф.оксиспорум НРРЛ 25509 650 100
F. oxysporum F. oxysporum f.сп. тюльпан НРРЛ 26954 651 99
F. oxysporum F.  oxysporum f. сп. тюльпан НРРЛ 26954 635 99
Fusarium solani Ф.solani видовой комплекс 5-й НРРЛ 32484 676 99
Ф. Солани F. solani видовой комплекс 6-e НРРЛ 32849 677 99
Ф. Солани Комплекс видов F. solani 5 г НРРЛ 25388 683 99
Ф. Солани Ф.solani видовой комплекс НРРЛ 32838 670 100
Фузариоз пролиферативный Ф. пролифератум ФД 01389 660 99
Fusarium subglutinans (FS-A) GFSC Gibberella fujikuroi Комплекс видов НРРЛ 25204 643 99
Ближайшие виды: Fusarium begoniae НРРЛ 31851 643 99
Ф. субглютинаны (ФС-А) GFSC G. fujikuroi видовой комплекс НРРЛ 25204 597 100
Ближайшие виды: F. begoniae НРРЛ 31851 597 99
Ф.субглютинаны (FS-B) GFSC G. fujikuroi видовой комплекс НРРЛ 31654 642 99
F. subglutinans (FS-B) GFSC Г.комплекс видов fujikuroi НРРЛ 31654 642 99
  • NRRL: идентификационный номер коллекции культур Службы сельскохозяйственных исследований; FD: Fusarium Регистрационный номер базы данных.

Тесты на патогенность

Все протестированные изоляты F. proliferatum и FS-B вызывали симптомы на листьях сорта орхидеи Dendrobium UH 800, тестируемый изолят постоянно выделялся из ткани с симптомами, и все неинокулированные (контрольные) растения оставались здоровыми (таблица). 3). Если рассматривать данные обоих экспериментов как блоки, то 70–100% растений, инокулированных F.proliferatum и FS-B заразились. anova показала, что не было значительных различий в частоте инфицирования между изолятами ( P  > 0,05; таблица 3).

Таблица 3. Частота заражения и условная тяжесть заболевания на орхидеях Dendrobium сорта UH 800 через 8 недель после инокуляции
Видыa Изолировать Хостb Инфекция (%)c Условная тяжесть (%)d
ФС-Б 401 Дендробиум 100 40·6 а
Фузариоз пролиферативный 60 Дендробиум 90 1·3 б
325 Потинара 90 23·5 б
374 Мокара 70 0·8 б
895 Грамматофиллум 100 12·0 б

Самый молодой из трех листьев, подвергшихся воздействию во время инокуляции, как правило, был наиболее сильно поражен (в среднем 55% растений среди всех изолятов), за ним следовали второй самый молодой (35% растений) и самый старый из трех листьев ( 21% растений; P  < 0,05 в тесте хи-квадрат равных частот).

Принимая во внимание данные об условной серьезности только для FS-B и изолята F. proliferatum из Dendrobium , anova показала, что взаимодействие изолята × эксперимента не является значимым ( P = 0,99), поэтому данные обоих экспериментов были комбинированный. Влияние изолята на условную тяжесть было значительным ( P  = 0,03), при этом FS-B был более вирулентным (40,6% площади листа с симптомами), чем F. proliferatum (1,3%; Таблица 3).В отдельном анализе, который включал данные о степени тяжести для всех изолятов F. proliferatum , не было выявлено значимого взаимодействия лечения и эксперимента ( P  = 0,19) и значимого эффекта изолята ( P  = 0,29). , что указывает на то, что изолята F. proliferatum из разных растений-хозяев были схожи по вирулентности на орхидей Dendrobium (таблица 3).

Все изоляты вызывали симптомы на листьях, которые начинались как вдавленные белые пятна, которые со временем медленно расширялись и темнели (рис. 1а). Кроме того, изоляты F. proliferatum 325 (из Potinara ) и 895 (из Grammatophyllum ), а также изолят FS-B 401 вызывали снижение всего растения у 20, 10 и 40% инокулированных растений соответственно. Увядание побегов произошло в результате некротической области, развившейся либо у основания, либо на верхушке псевдостебля, называемой соответственно базальной или верхушечной псевдостеблевой гнилью. Верхушечная псевдостеблевая гниль возникает, когда инфекции в основании листа приводят к некрозу верхушки побега (откуда появляются листья), что приводит к гибели всех листьев и, в конечном итоге, к деградации ткани псевдостебля (рис.1б). Базальная псевдостеблевая гниль развивалась, когда воротничковые инфекции вблизи линии почвы опоясывали побег, вызывая отмирание псевдостебля и листьев (рис. 1с). В обоих случаях тяжесть симптомов была зарегистрирована как 100% зараженная площадь листа (обратите внимание, что в этом случае более точным описанием будет процент пораженной площади листа, поскольку грибы фактически не колонизировали весь лист).

Обсуждение

Orchidacae — одно из крупнейших и самых разнообразных семейств растений, и орхидеи приобретают все большее значение в индустрии декоративных растений, однако относительно мало известно о патогенах орхидей.Большинство исследований было в основном сосредоточено на орхидеях Cymbidium и Phalaenopsis (например, см. Hadley et al ., 1987; Benyon et al ., 1996; Simone & Burnett, 2002; Chung , 0 0003 et al. 2011) и, хотя вида Fusarium обычно ассоциируются с заболеванием, исследования, характеризующие патогенную взаимосвязь, проводятся редко. Это исследование предоставляет новую информацию о патогенах орхидей Dendrobium и предполагает гораздо более широкий круг хозяев, чем описано ранее для пяти основных видов Fusarium , которые, как было установлено, связаны с орхидеями с симптомами увядания на Гавайях.

Похоже, что вида Fusarium стали широко распространены на Гавайях с момента их открытия в одном питомнике в 1991 г. К моменту проведения исследования в рамках настоящего исследования (2005–2006 гг.) вида Fusarium были обнаружены в каждом питомнике. исследованы на островах Мауи, Оаху и Гавайях. Расселение могло происходить частично за счет обмена растительным материалом между питомниками как внутри островов, так и между ними.

На основе 186 образцов растений из девяти питомников на трех островах, F.proliferatum был наиболее часто выделяемым видом, хотя виды F. solani , F. oxysporum и F. subglutinans- также часто обнаруживались. За исключением последнего, все эти виды были описаны как патогены орхидей, в первую очередь Cymbidium , Phalaenopsis и/или ванильных орхидей, вызывающие пятнистость листьев, гниль псевдобульб и корневую гниль. Результаты текущих исследований показывают, что вида Fusarium также могут быть ответственны за увядание рассады, гниение бутонов и цветков, а также деградацию оболочки.Хотя два неохарактеризованных вида, подобных F. subglutinans , ранее не были описаны как патогены для орхидей, они могут быть представлены среди изолятов F. subglutinans , ранее описанных как патогены Cymbidium и Phalaenopsis (Benyon et al. ., 1996; Broadhurst & Hartill, 1996).

Поскольку орхидеи Dendrobium вносят наибольший вклад в выращивание орхидей на Гавайях и являются одним из наиболее сильно пораженных родов (особенно с точки зрения симптомов болезни листьев), они были в центре внимания испытаний на патогенность.Постулаты Коха были удовлетворены для изолятов F. proliferatum и FS-B как причин появления лиственных симптомов на орхидеях Dendrobium , включая желтую пятнистость листьев, пятнистость листьев и псевдостеблевую гниль (верхушечную или базальную), которые привели к упадку. Псевдостеблевая гниль, особенно верхушечная гниль, обычно наблюдается у Dendrobium и других орхидей в питомниках на Гавайях. Насколько известно авторам, это первое описание верхушечной и базальной псевдостеблевой гнили, вызванной видом Fusarium , на любом роде или гибриде орхидей, хотя, вероятно, она похожа на псевдобульбовую гниль, описанную для F. subglutinans в Cymbidium (Broadhurst & Hartill, 1996).

Хотя изоляты F. oxysporum и F. solani были связаны с симптомами листвы Dendrobium , эти изоляты были обнаружены только после начала испытаний на патогенность и поэтому не были включены. Два изолята, идентифицированные как FS-A, не тестировались на патогенность, поскольку они не были выделены из орхидей Dendrobium .Очевидно, необходимы дальнейшие исследования, чтобы определить, вызывают ли эти виды лиственные заболевания, и установить, в какой степени все виды, выявленные в этом обзоре, могут вызывать другие наблюдаемые симптомы, включая фитофтороз, корневую гниль и гниль псевдобульб.

Виды

Fusarium также были связаны с симптомами упадка у нескольких других экономически важных родов и гибридов, включая Brassolaeliocattleya и Miltonia .О многих из этих ассоциаций ранее не сообщалось, поскольку они представляют собой уникальные сорта, выведенные и произведенные только на Гавайях. В испытаниях на патогенность с F. proliferatum все изоляты, извлеченные из листовых тканей с симптомами на различных родах, были патогенными на Dendrobium . Таким образом, хотя F. proliferatum , вероятно, различается по своей способности вызывать заболевание у разных родов и гибридов орхидей, эти результаты показывают, что этот (и, возможно, другой) вид может вызывать симптомы упадка у широкого круга хозяев.Изучение вирулентности других экономически важных родов и гибридов улучшит понимание биологии патогенов Fusarium и влияния этого и других видов на выращивание орхидей на Гавайях и в других местах.

Борьба с болезнями, вызываемыми Fusarium spp. на орхидеях будет зависеть от сочетания надлежащей санитарной практики, использования фунгицидов и регулирования импортного материала. Поскольку молодые, формирующиеся листья наиболее восприимчивы к инфекции, меры борьбы, вероятно, будут в значительной степени зависеть от ограничения возможности заражения листьев при появлении всходов. Исследования показывают, что эти патогены также могут вызывать цветочные инфекции, а предварительные испытания показывают, что F. proliferatum может вызывать фитофтороз (неопубликованные данные авторов). Ткань цветка также представляет собой сочное и очень восприимчивое место заражения и, таким образом, представляет собой еще одну стадию развития, на которой может потребоваться защита. Необходимы дальнейшие исследования для изучения влияния окружающей среды на развитие болезни Fusarium и для оценки агротехнических приемов, таких как методы орошения, которые могут усугубить воздействие патогенов.

Орхидеи очень медленно растут, и им требуется не менее 2–3 лет, чтобы достичь зрелости, после чего их можно будет продавать или размножать для получения цветочных стеблей. Питомники на Гавайях обычно отправляют молодые растения в Юго-Восточную Азию, где их выращивают в течение 2–3 лет, а затем отправляют обратно на Гавайи. Кроме того, многие из этих орхидей позже отправляются на материковую часть США, где существует большой рынок родов и гибридов орхидей, произведенных на Гавайях. Перемещение растений орхидей между Гавайями, Юго-Восточной Азией и целевым рынком на материковой части США является идеальным средством для внедрения патогенов в новые районы.Кроме того, распространение на Гавайях усугубляется обменом посадочным материалом между питомниками внутри и между островами. Для защиты выращивания орхидей как на Гавайях, так и на материковой части США (в частности, во Флориде и Калифорнии, где также выращивают орхидеи) может оказаться важным более тщательный осмотр зараженного материала на национальном и региональном уровнях, чтобы уменьшить распространение патогенов и предотвратить появление новых, более вирулентные виды.

Благодарности

Поддержку этому проекту оказали Гавайская ассоциация производителей орхидей (HOGA) и Гавайская ассоциация производителей орхидей Дендробиум.Кроме того, авторы хотели бы поблагодарить Томаса Р. Гордона за редакторскую помощь, Нила МакРобертса за статистическую поддержку и Шаобина Чжун за помощь в молекулярном анализе.

    Борьба со стеблевой гнилью орхидеи фаленопсис – Мой дневник орхидей

    Иногда орхидеи Фаленопсис могут поражаться гнилью. Есть много разных типов, которые могут поражать орхидеи, но на этот раз мы имеем дело со стеблевой гнилью. У основания этой орхидеи фаленопсис есть небольшой участок черной ткани, который появился после того, как нижние три листа пожелтели и опали.Один лист за раз — это нормально, а три? №

    На этом фаленопсисе развилась стеблевая гниль.

    Стеблевая гниль вызывается скоплением воды на стебле моноподиальной орхидеи. Растительная ткань начинает разлагаться и чернеть, и, если ее не лечить, орхидея может погибнуть. Обычно это можно предотвратить, но обычно это происходит, когда наши растения получают воду между листьями. Простой способ предотвратить это — удалить лишнюю воду или попытаться избежать попадания брызг на саму орхидею.

    Я решил провести экстренную герметизацию, чтобы иметь возможность легко добраться до мертвой ткани. К сожалению, похоже, что стеблевая гниль поразила больше тканей стебля, чем я думал сначала. Я пытаюсь лечить это перекисью водорода 3% и корицей. Перекись водорода 3% должна убить гниль, в то время как корица помогает высушить пораженный участок, предотвращая его распространение на остальные части растения.

    Стеблевая гниль распространилась дальше вокруг основания этой орхидеи — удаление мертвой ткани листа выявило больше гнили 😦

    Ей потребуется пересадка, и она будет помещена выше в пластиковый горшок, чтобы снизить риск повторения этого.Я заметил, насколько мала ее корневая система по сравнению с другими орхидеями в моей коллекции, но она еще молода.

    Поднятие орхидеи выше уровня новой коры может помочь снизить риск развития стеблевой гнили.

    Я буду держать вас в курсе, работает ли это лечение — надеюсь, с этой гнилью покончено вовремя, чтобы спасти орхидею.

    Счастливого роста!

    Клэр

    Нравится:

    Нравится Загрузка…

    Родственные

    Почему у моей орхидеи ломаются листья?

    Вы ежедневно ухаживаете за своими прекрасными орхидеями, поэтому особенно тревожно однажды увидеть их и увидеть, как распускаются листья орхидеи. Вы не знаете, как это произошло. Вы сделали что-то не так, например, перелили или погрузили их?

    Почему у моей орхидеи ломаются листья? Расщепление листьев орхидеи может быть связано с нерегулярным поливом, недостаточной влажностью, чрезмерным воздействием прямых солнечных лучей или в результате травмы растения орхидеи. Однако иногда даже при отличном уходе листья орхидеи могут растрескиваться, и это не имеет значения, если в остальном растение здоровое и за ним хорошо ухаживают.

    Хотя расщепленные листья орхидеи могут свидетельствовать или не указывать на более серьезную проблему, вам все равно нужно разобраться в сути проблемы.Остальная часть этой статьи расскажет вам, почему именно расщепляются листья орхидеи, что с этим делать и как это предотвратить. Я также освещаю эту тему в видео ниже.

    Что вызывает расщепление листьев орхидеи?

    Как мы упоминали во вступлении, если листья вашей орхидеи расщепляются или расщепляются, это может быть не из-за плохого ухода, но есть ряд причин, о которых следует подумать, которых вы сможете избежать в будущем. Вот причины, объясненные более подробно.

    Неустойчивый полив

    Переменный полив орхидей, особенно орхидей фаленопсис, может привести к расщеплению листьев. Листья орхидеи фаленопсис твердые на ощупь, и внутри листа существует значительное тургорное давление, которое поддерживает форму листа.

    Когда лист орхидеи на некоторое время лишен воды, он сморщивается и начинает увядать. Если растению впоследствии дать воду, лист набухает от воды и пытается вернуться к своей нормальной форме.Из-за напряжения, которое это создает в листе, это может привести к расщеплению самой слабой части листа, жилки, которая проходит посередине.

    В этом руководстве я упростил полив ваших орхидей фаленопсис. Это снимает все тайны с полива орхидей фаленопсис и развеивает множество распространенных мифов о поливе орхидей.

    Отсутствие влажности

    У некоторых видов орхидей, таких как фаленопсис или мотыльковая орхидея, недостаток влажности может вызвать расщепление листьев. Вы должны убедиться, что ваши растения получают достаточно влаги, так как, если они высохнут, это повлияет на силу и стабильность листьев.

    Если вы держите орхидеи в месте с низким уровнем влажности, вы можете использовать увлажнитель воздуха или лоток с галькой, чтобы повысить местную влажность и, надеюсь, предотвратить проблемы, которые могут возникнуть при низком уровне влажности.

    Чрезмерное воздействие прямых солнечных лучей

    Многие орхидеи хорошо себя чувствуют при непрямом солнечном свете и могут испытывать трудности при длительном воздействии жарких прямых солнечных лучей.Это особенно верно для самого распространенного комнатного растения орхидеи, орхидеи фаленопсис. Листья орхидеи могут получить солнечные ожоги и высохнуть, что приведет к растрескиванию и растрескиванию листьев посередине.

    Чрезмерное количество прямых солнечных лучей было одной из основных причин того, что листья орхидеи, изображенной выше, потрескались. Летом эту орхидею держали на южном окне под прямыми солнечными лучами. Помимо ожогов листьев и обожженных кончиков листьев, на некоторых листьях имеются большие трещины в центре.

    Любопытные дети или домашние животные

    Если у вас есть дети в доме, они, наверное, не понимают, насколько нежны ваши орхидеи и другие цветы могут быть. Все, что им нужно, это схватить орхидею за ее листья, и они, скорее всего, расколются. Аналогично, если у вас есть кошка или собака, любой питомец может получить свои лапы или когти рядом с вашими орхидеями и вызвать лист и повреждения цветка.

    Упавшие растения орхидеи

    Иногда Худшее случается, и вы случайно уроните свой горшок с орхидеями.Они, вероятно, не конец, но цветы могут получить некоторые повреждения. Листья могут легко расщепляться или полностью разорваться в зависимости от тяжести падения.

    Общие хулиганские действия

    Вы должны быть нежный с орхидеями и другими цветами. Быть слишком грубым с обрезкой и уход приведет к повреждению как листьев, так и цветов. Побалуйте свои цветы хорошо, и они будут хорошо относиться к вам в ответ.

    Подержанные цветы

    Если вы получили ваши орхидеи от кого-то другого, возможно, они были повреждены.Этот это не из-за того, что вы сделали, и это может быть даже не предыдущий владелец вина. Любая из вышеперечисленных причин могла привести к расщеплению листьев, но решать вам. проблема, с которой нужно разобраться сейчас.

    Имеет ли значение, является ли разделение вертикальным или Горизонтальный?

    Направление расщепления листа важно, поскольку оно может помочь определить причину.

    Вертикальные трещины встречаются чаще, чем горизонтальные, и могут быть, а могут и не быть результатом неправильного ухода.

    Горизонтальные расщепления обычно возникают из-за травмы, вызванной падением или иным небрежным обращением с растением, но иногда могут возникать при сильном повреждении листьев чрезмерным солнечным светом.

    На что еще следует обратить внимание?

    Если у вашей орхидеи расщепленные листья, важно проверить наличие других признаков повреждения листьев, которые могут помочь вам установить причину проблемы. Листья часто могут быть повреждены разными способами по одной и той же причине.

    Регулярно осматривайте листья орхидеи на наличие признаков следующих заболеваний и инфекций.

    Солнечный ожог

    В то время как цветы, такие как орхидеи, должны получать достаточное количество солнечного света, размещение их в слишком солнечном месте может привести к солнечным ожогам на листьях.Вы узнаете, что ваша орхидея обгорела на солнце, если листья желтеют или на них появляются темно-коричневые или белые пятна. В конечном итоге они станут черными.

    Если вы обратите внимание на свои цветы, вы можете получить солнечные ожоги достаточно рано, глядя на цвет листьев. Листья желтеют на начальных стадиях солнечного ожога. Это неестественно для орхидей. Переместив цветы в другое место, солнечный ожог не должен ухудшиться.

    В этой статье я рассмотрел причины, по которым у орхидей желтеют листья.Если у вашей орхидеи желтеют листья, это поможет вам быстро определить и устранить причину.

    Если вы получили солнечный ожог на ранней стадии, когда листья увяли, но еще не повреждены, они выздоровеют, если их поместить в менее освещенное место на несколько месяцев. Как только на листьях появляются ожоги и трещины, это необратимо, и вы можете обрезать или удалить пораженные листья.

    Пятнистость листьев

    Когда вы проверяете листья своей орхидеи, обязательно загляните и под них.Здесь вы можете найти пятна на листьях. Пятна на вид желтые с коричневыми и белыми краями. Пятна на листьях вызваны грибком и будут ухудшаться. Со временем пятна чернеют или становятся темно-коричневыми. Также может поражаться верхняя сторона листа.

    Если у вашей орхидеи есть пятна на листьях, вам придется срезать зараженные листья. Возможно, вам также придется переместить горшок, если у вас есть другие растения поблизости, так как пятнистость листьев может распространиться.

    Во избежание грибковых пятен на листьях я не рекомендую опрыскивать орхидеи.Это имеет больше рисков, чем преимуществ, и есть лучшие способы увеличить влажность для ваших орхидей. Я написал статью о лучших способах достижения идеального уровня влажности для ваших орхидей без увеличения риска заболеваний.

    Использование воды и раствор для замачивания пищевой соды может убить бактерии, если вы хотите пойти дальше. маршрут без химикатов. В противном случае убедитесь, что средство, которое вы покупаете, содержит октаноат меди. и сера для достижения наилучших результатов.

    Бактериальные коричневые пятна

    Если вы видите поражение листьев, это может быть бактериальная коричневая пятнистость.Это бактериальное состояние гниет листья. Поражение будет влажным на ощупь, потому что оно перенасыщено вода. Он также имеет более впалый вид по сравнению с остальной частью листа.

    Поскольку это болезнь, бактериальные коричневые пятна могут продолжать расти. Это становится особенно верно, если вы добавите больше воды к поврежденным листьям.

    К сожалению, бактериальная пятнистость листьев неизлечима. Лучшее решение – удалить пораженные листья, либо обрезать их с большим запасом прочности.

    После того, как вы удалили всю пораженную листву, вы должны использовать садовые обработки, предназначенные для бактериальных заболеваний, чтобы предотвратить заражение оставшихся здоровых частей растения.Другие варианты включают фунгициды на основе меди и спреды серы. Масло нима представляет собой натуральное решение, похожее на пищевую соду. Вам нужно наполнить бутылку водой (один галлон), жидким мылом (чайная ложка), растительным маслом (две с половиной столовые ложки) и пищевой содой (одна столовая ложка). Затем опрыскайте листья.

    Черная гниль

    Тогда есть черная гниль, при которой полностью загнивают листья. Они будут выглядеть коричневато-фиолетовыми на сначала, а затем становятся почти полностью черными. Листья также будут мягкими.

    Как и некоторые другие заболевания листьев, черную гниль можно заразить на ранней стадии, если знать, что искать. Например, края листьев станут желтыми. Лучше всего лечить черную гниль как можно скорее, потому что болезнь может достичь корневища орхидеи и, в конечном итоге, корней. К тому времени для цветов, вероятно, будет уже слишком поздно.

    Если черная гниль еще не распространилась на корни, то можно попытаться спасти свои орхидеи. Лучше всего для этого срезать почерневшие листья или другие части растения.Вы можете использовать нож или резак, чтобы сделать нарезку. Убедитесь, что вы отрезали немного больше листа, чем черного.

    Включение небольшого количества здоровой ткани листа потенциально может остановить распространение инфекции. Вы даже можете спасти свои орхидеи, если черная гниль добралась до корневища. Вы должны вырезать каждый зараженный рост. Помните, что вам также нужны здоровые ткани.

    Тогда можешь идти химический способ обработки орхидей с использованием предпочитаемого вами фунгицида. Также, вы можете использовать натуральные растворы.Отличный вариант без химии у вас наверняка уже есть в вашей кладовой корица. Это защитит от грибка инфекции, а также приятно пахнет. Нанесите фунгицид на свежесрезанный лист, щедро покрывая его.

    Есть ли способ исправить расщепленные листья орхидеи?

    В то время как вышеперечисленные заболевания и инфекции листьев орхидей следует лечить немедленно, расщепленные листья орхидей, как правило, менее опасны. Конечно, они бельмом на глазу, но часто не приведут к худшему для ваших растений.

    Быть на безопасная сторона, вы можете обрезать вокруг раскола. Всегда убедитесь, что вы используете стерильные фрезы для работы. В противном случае вы можете вызвать появление бактерий или грибков. распространять и потенциально убивать ваши орхидеи. Отрежьте поврежденный лист именно там, где произошел раскол.

    Если хотите, Вы можете использовать фунгицид после обрезки. Это защитит открытый лист от заражение. Здесь снова пригодится корица.

    Вы сейчас по существу сделал все возможное для расщепленного листа орхидеи.Лучшее, что можно сделать сейчас продолжать ухаживать за вашими цветами. Листья в конечном итоге вырастут, делая раскол менее очевиден.

    Советы по предотвращению дальнейшего расщепления листьев

    Может быть душераздирающе видеть расщепленные листья у ваших орхидей. Это прекрасные цветы, и повреждение листьев немного отвлекает от этого. У тебя нет выбора, кроме как быть терпеть и позволить расколу вырасти, но как избежать дальнейших расколов и повреждать? Вот несколько указателей:

    • Храните орхидеи в местах, недоступных для детей и домашних животных.Научите своих детей не трогать ваши цветы.
    • Следите за тем, чтобы ваши орхидеи регулярно поливались, но не переувлажнялись. Если листья кажутся сухими, вы можете подумать об увеличении количества воды, которую вы даете им.
    • Всегда бережно обращайтесь с орхидеями. Не трясите их и не обращайтесь с ними грубо. Если вам нужно переместить орхидеи с одного места на другое, поднимайте и переносите их осторожно, не торопясь.
    • Убедитесь, что ваши орхидеи хранятся в месте с хорошим освещением и влажностью, чтобы снизить риск повреждения листьев.
    • Убедитесь, что ваши орхидеи получают питательные вещества с помощью удобрений или других средств. Это позволяет им вырастить сильные, здоровые листья, которые с меньшей вероятностью растрескаются. Все о том, как удобрять орхидеи фаленопсис, читайте здесь.

    Если хотите узнать больше, у меня есть целая серия статей об уходе за орхидеями. У меня также есть бесплатная электронная книга по уходу за орхидеями фаленопсис, которую вы можете скачать. Также обязательно ознакомьтесь с разделом ресурсов, который наполнен полезными советами о лучших инструментах, материалах и ресурсах для ухода за всеми вашими комнатными растениями.

    Борьба с вредителями орхидей с помощью Silwet® L-77 и садовых масел

    Р. А. Кейтинг, А. Дж. Палматир, М. А. Хой и Р. Газис 2

    Популярность орхидей в Соединенных Штатах постоянно растет, и орхидеи являются вторым по популярности горшечным растением после пуансеттии (Jerardo 2007). Орхидеи восприимчивы к многочисленным членистоногим вредителям, с которыми бывает трудно бороться. Обычными членистоногими вредителями орхидей, с которыми часто сталкиваются любители, являются щитовка буйсдуваля ( Diaspis boisduvalii ) и несколько клещей, чаще всего двухпятнистый паутинный клещ ( Tetranychus urticae ) и несколько плоских клещей (Tenuipalpidae), включая орхидейного клеща (). Tenuipalpus orchidarum ), клещ фаленопсис ( T.pacificus ) и клещ онцидиум ( Brevipalpus oncidii ) (Johnson 2008, 2010).

    Большинство любителей орхидей используют синтетические органические пестициды при обработке растений от заражения членистоногими. Однако многие орхидеи чувствительны к химическим пестицидам, что может привести к повреждению растений и цветов. Кроме того, проблемы со здоровьем и развитие устойчивости вредителей ко многим пестицидам делают желательными менее токсичные варианты борьбы с членистоногими, особенно для любителей или небольших коммерческих производителей.

    Исследователи UF/IFAS оценили способность Silwet® L-77, поверхностно-активного вещества, используемого для увеличения распространения и смачиваемости пестицидов, повышать эффективность садовых масел в борьбе с щитовкой и заражением орхидей клещами. Были проведены первоначальные эксперименты, чтобы определить, вызывает ли один только Silwet® L-77 повреждение орхидей в тепличных условиях. Представители семи родов были проверены: Dendrobium , OnCidium , DoritaeNOPSIS ( Phalaenopsis Hybrids), Paphiopedilum , Epidendrum , Cymbidium и Cattleya .Никакой фитотоксичности по отношению к листьям, корням, стеблям, бутонам или цветкам не наблюдалось ни у одной из протестированных орхидей при температуре от 21,0°C до 35,0°C (69,8°F–95,0°F) и относительной влажности от 45% до 95% (рис. 1).

    Фигура 1. Некоторые из орхидей, использованных в исследовании фитотоксичности: A) Dendrobium , B) Phalaenopsis , C) Paphiopedilum и D) Cattleya . Никаких признаков фитотоксичности не наблюдалось на листве, корнях, цветках или почках любого из растений.

    После того, как первоначальные тесты показали, что тестируемые растения не были подвержены фитотоксичности, исследователи получили растения от нескольких коммерческих производителей во Флориде, которые были заражены щитовкой буйсдуваля (рис. 2) или плоским клещом. Масло + Silwet® L-77 уменьшало плотность чешуи в большей степени, чем контроль воды или только масло (рис. 3–5), в то время как смертность чешуек, которые не удалялись опрыскиванием, увеличивалась с 39% до 47% при использовании только масла и с 86% % до 93% с маслом + Silwet® L-77.Аналогичным образом, при обработке орхидей Dendrobium , зараженных плоскими клещами, количество клещей значительно уменьшилось при использовании масла + Silwet® L-77 по сравнению с использованием только масла. (Для просмотра полного документа посетите http://journals.fcla.edu/flaent/article/view/76056.)

    Фигура 2. Орхидеи Cattleya до обработки водой, маслом или маслом Silwet® L-77 + были сильно заражены щитовкой боисдуваля. Рисунок 3. Орхидея Cattleya после обработки водой имела высокую популяцию чешуи боисдуваля.Рисунок 4. Cattleya орхидея после обработки садовым маслом; заражение щитовкой boisduval уменьшилось, но все еще заметно на некоторых листьях. Рисунок 5. орхидея Cattleya после обработки садовым маслом + Silwet® L-77; на листьях, соцветиях или псевдобульбах чешуйчатые чешуи отсутствуют, хотя на некоторых листьях видны повреждения от чешуй.

    Результаты показывают, что добавление Silwet® L-77 к садоводческим маслам значительно повышает его эффективность по сравнению с одним маслом при обработке растений от щитовки Boisduval или заражения плоскими клещами, и это может хорошо работать в отношении других членистоногих. Указания по использованию масла + Silwet® L-77 приведены ниже с использованием размеров, подходящих для домовладельцев.

    Масло для смешивания + Silwet® L-77

    1. Смешайте садовое масло с водой в соответствии с указаниями.

    2. Добавить Silwet® L-77 в концентрации 0,05%. Шприц или другое устройство для измерения таких малых количеств полезно при измерении этого количества жидкости. См. Таблицу 1 для помощи в измерениях.

    Нанесение масла + Silwet® L-77 на растения

    1. Хотя на орхидеях, использованных в этом исследовании, фитотоксичность не наблюдалась, другие роды и межродовые гибриды могут проявлять симптомы фитотоксичности после обработки.Следует соблюдать осторожность при обработке растений в первый раз. Перед опрыскиванием больших групп однотипных растений рекомендуется протестировать отдельное растение.

    2. Стопроцентный охват имеет решающее значение. Обработке подлежат все надземные части растений, как верхняя, так и нижняя поверхность листьев, вплоть до горшечной смеси. Корни также можно обрабатывать при наличии вредителей, таких как мучнистые червецы, которых иногда можно обнаружить на корнях.

    3. Поскольку на растениях не остается остатков химикатов, важно следить за популяциями вредителей после обработки и при необходимости проводить повторную обработку в соответствии с рекомендациями производителя масла.

    Другие соображения

    1. Из-за чувствительности некоторых орхидей рекомендуется опрыскивать растения в начале дня, когда прохладнее. Хотя в этом исследовании фитотоксичности орхидей не наблюдалось, жара увеличивает риск повреждения при использовании масел.

    2. В литературе есть сообщения о повышении частоты бактериальных заболеваний при использовании Silwet® L-77. Таким образом, если в зоне выращивания в анамнезе были бактериальные заболевания или подозревается наличие бактериальных заболеваний, используйте с осторожностью (т.е., используйте в начале дня, чтобы свести к минимуму влажность листьев, удалите все растения с симптомами и обработайте от бактериальных заболеваний).

    Ссылки

    Джерардо, А. 2007. «Ежегодник по цветоводству и питомникам». Служба экономических исследований, Министерство сельского хозяйства США . По состоянию на апрель 2018 г. http://usda.mannlib.cornell.edu/usda/ers/FLO-yearbook/2000s/2007/FLO-yearbook-10-04-2007.pdf

    Джонсон, П. Дж. 2008. «Клещи на культивируемых орхидеях». По состоянию на сентябрь 2009 г.http://www.sdstate.edu/ps/Severin-McDaniel/orchid-pests/upload/Mites-on-Cultivated-Orchids.pdf.

    Джонсон, П. Дж. 2010. «Шкала Буадюваля на орхидеях». По состоянию на август 2009 г. http://www.sdstate.edu/ps/Severin-McDaniel/orchid-pests/upload/Boisduval-scale-on-orchids2.pdf.

    Столы

    Таблица 1.

    Таблица измерений масла + Silwet® L-77 с использованием измерений, подходящих для любителей орхидей.

    .

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован.